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8/17/2019 Chepe Tema
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TEMA 8
Selección, recolección ytransporte de muestras
para examen microbiológico
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Tema 8. Selección, recolección y transporte de muestras para examen
microbiológico.
1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra
2. Identificación de la muestra3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
4. Volumen o tamaño de la muestra
5. Transporte de la muestra
6. Rechazo de las muestras
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• Siempre que sea posible, las muestras deben tomarse antes de iniciar laadministración de agentes antimicrobianos.
1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra
• El material debe ser tomadode los lugares donde sea másprobable encontrar elmicroorganismo responsablede la infección con la menor
contaminación externaposible.
• Debe tenerse en cuenta elestadío de la enfermedad enel que se recoge la muestra.
• Debe tomarse la muestra encantidad suficiente parapermitir un análisiscompleto.
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1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra
• Si la muestra la toma el propio paciente (orina,heces, esputo), debe ser instruido para que lo hagade manera correcta.
Orina
─ Orina de primera hora de la mañana
─ Lavado de la zona periuretral y perineal
─ Orina de chorro medio, recipiente, volumen
Heces ─ Recipiente adecuado
─ Cantidad de muestra
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1. Consideraciones generales para la selección y recogida de la muestra
Esputo
─ Primera hora de la mañana
─ Recipiente adecuado
─ Enjuagar la boca (gárgaras)
─ Expectoración profunda
o Fisioterapia respiratoria
Drenaje postural
Percusión torácica
o Uso de nebulizadores
─ Volumen mínimo de muestra
•
Las muestras deben colocarse en recipientes estériles para evitar riesgos alpaciente o al personal que las transporte.
• Deben tomarse las medidas oportunas para que las muestras sean remitidasrápidamente al laboratorio.
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Rotular correctamente el envase con la muestra
• Nombre del paciente
• Código de la muestra (código de barras,
número)
• Fecha y hora de la toma de muestra
• Tipo de muestra y pruebas solicitadas
• Indicar si el paciente está tomando antibióticos
• Concordancia con el volante de solicitud
• Otros datos de interés (viajes, etc.)
2. Identificación de la muestra
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3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
• Frascos de boca ancha (contenedores)
–
Orina
– Heces
– Esputo
– Punta del catéter
– Biopsias de tejidos
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• Hisopos o escobillones
o
Material de los escobillones
– Mango
• Rígido (madera, plástico)
• Flexible (metal)
3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
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– Torunda
•
Algodón• Dacrón o rayón
• Alginato cálcico
3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
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o Hisopos con medio de transporte
–
Stuart – Amies
– Cary-blair
– Hanks
3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
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• Aguja y jeringa estériles
–
Aguja y jeringa estériles másfrasco con líquido
o Sangre
o LCR
– Aguja y jeringa estériles más
catéter
o Aspiración translaríngea
3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
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• Otros
– Bolsa para recogida de orina
(recién nacidos)
– Papel adhesivo para recogida
de heces (parásitos)
– Endoscopia (broncoscopia)
3. Recipientes y dispositivos para la toma de muestras
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• Orina (urocultivo convencional 10-20 mL)
• Heces (2-15 mL; muestra equivalente al tamaño de una nuez)
• Sangre (para hemocultivo, 10-20 mL; 1-5 mL niños)
• Líquido cefalorraquídeo (1-3 mL)
• Esputo
• Líquidos pleural/pericárdico (1 ml virus; 5-15 ml bacterias)
• Líquido ascítico (5-15 mL)
• Líquido articular (1 mL)
• Tejidos y huesos (biopsia)
4. Volumen o tamaño de la muestra
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5. Transporte de la muestra
Objetivos del transporte
•Mantener la muestra a ser posible como en su estado original
• Que se produzca el mínimo deterioro
• Evitar condiciones adversas (calor, frío, desecación, cambios de presión, etc.)
Si el tiempo que va a transcurrirdesde la toma de muestras hasta
su inoculación es muy grande,
hay que utilizar un medio de
transporte
El objetivo del medio de transportees prolongar la viabilidad de los
microorganismos
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• Importancia del transporte rápido
– Muestras de orina
– Mycobacterium tuberculosis en esputo
– Muestras de heces
Shigella, Salmonella, Yersinia
Caldos de enriquecimiento
5. Transporte de la muestra
• Tiempo
– Máximo 2 horas a temperatura ambiente dentro del propio hospital
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• Temperatura
– Siembra inmediata: muestras con gonococos; LCR con presunciónde meningitis.
– Temperatura ambiente: fragmentos de pelo, piel y uñas para
aislamiento de hongos.
– Refrigeración: orina, 24 h; hisopos de garganta, 2-3 horas.
– Congelación: muestras de virus conservadas más de 24 horas;
muestras de heces para investigar toxina de Clostridium difficile.
–
Nunca refrigerar: hisopos de heridas para cultivo en anaerobiosis.
– Nunca congelar: muestra de sangre coagulada.
5. Transporte de la muestra
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5. Transporte de la muestra
• Medios de transporte
– Para bacterias
• Medio de Stuart
• Medio de Amies
•
Medio de Cary-Blair
– Específicos de gonococos
• Medios Transgrow
• Placas Jembec
– Para virus
• Medio de Hanks
Composición del medio de transporte Stuart
Cloruro sódico 3 g
Cloruro potásico 0,2 g
Fosfato disódico 1,15 gFosfato monopotásico 0,2 g
Tioglicolato sódico 1 g
Cloruro cálcico 10 g
Cloruro magnésico 10 g
Agar 4 g
Agua destilada 1 L
pH:7,3
Placa Jembec Hisopo
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• ¿Cuándo y dónde se realiza el rechazo de las muestras?
• Criterios generales para el rechazo de las muestras
– Identificación
– No se especifica el sitio anatómico/el análisis solicitado
– Transporte inadecuado
Temperatura inadecuada
Muestras abiertas/derramadas
Condiciones de anaerobiosis
Hisopos secos• Criterios particulares para las muestras de orina
• Criterios particulares para las muestras de esputo
6. Rechazo de las muestras