IMPORTANCIA DEL EVENTO
• DESCRIPCIÓN DEL EVENTO
• Zoonosis que afectan la piel, mucosas o visceras• Vector: insecto flebotomíneo, del género Lutzomyia
DESCRIPCIÓN DEL EVENTOLEISHMANIASIS CUTÁNEA
• Pápulas pequeños nódulos firmes • Manifestaciones clínicas: de acuerdo a la respuesta inmune del hospedero, la especie del parásito y el tiempo de evolución de la infección
http://www.who.int/campaigns/world-health-day/2014/photos/leishmaniasis/es/
LEISHMANIASIS MUCOCUTÁNEA• Lesiones en mucosa nasal, faringe, laringe, paladar o labio• Síntomas: epistaxis, prurito, obstrucción nasal y congestión• Hay compromiso de mucosa del TRS, con edema, ulceración, prurito nasal, rinorrea serohemática o purulenta y epistaxis
LEISHMANIASIS VISCERAL• Invasión del sistema retículo-histiocitario• Reproducción y diseminación por vía linfática o sanguínea hasta macrófagos de MO, hígado y bazo• Síntomas: fiebre intermitente, malestar general, astenia, anorexia, enflaquecimiento progresivo, micropoliadenopatías, anemia y signos de desnutrición
• http://www.who.int/campaigns/world-health-day/2014/photos/leishmaniasis/es/
ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOSAPECTO DESCRIPCIÓN
AGENTE ETIOLÓGICO Parásitos protozoarios de la familia Trypanosomatidae, género LeishmaniaEn Guatemala: L. braziliensis, L. Panamensi, L. mexicana
MODO DE TRANSMISIÓN Picadura del vector flebotomíneo Lutzomyia, infectado con promastigote del parásito, picaduras en sitios expuestos
PERÍODO DE INCUBACIÓN Leishmaniasis cutánea: 3 a 6 mesesLeishmaniasis mucosa: meses o años después que la una lesión cutánea a cicatrizado espontáneamente Leishmaniasis visceral: 3 a 8 meses
PERÍODO DE TRANSMISIBILIDAD El hombre es infectante mientras haya parásitos en las lesiones de la piel o en sangre circulanteLC: perduran de pocos meses a 2 añosLV: parásitos persistente incluso después del restablecimiento clínico de los pacientes Límite de 10 días a varios años
ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOSASPECTO DESCRIPCIÓN
SUSCEPTIBILIDAD El factor más importante es la inmunidad con la respuesta adecuada por células
RESERVORIO LC: Mamíferos silvestres: perezosos de 2 y 4 uñas, el oso hormiguero, chuchas o zarigüeyas, rata silvestre y el puerco espín LV: perro principal reservorio domésticoLC: hospedero reservorio accidental: perro
VECTORES 135 especie válidas del género Lutzomyia. L. Panamensis -> Lu. TrapidoiL. Guyanensis -> Lu. UmbratisL. Braziliensis -> Lu. SpinicrasaL. Infantun -> Lu. EvansiL. Colombiensis -> Lu. HarmanniL. Panamensis _> Lu. LongiflocosaL. Chagasi -> Lu. longipalpis
INFORMACIÓN Y CONFIGURACIÓN DEL CASO
TIPO DE CASO CARÁCTERÍSTICAS D ELA CLASIFICACIÓN
CASOSO SOPECHOSO DE LEISHMANIASIS CUTÁNEA O MUCOCUTÁNEA
Paciente con lesiones cutánea procedente de áreas endémicas que cumpla con 3 o más de los siguientes criterios: sin historia de trauma, evolución mayor de 2 semanas, úlcera redonda u ovalada con bordes levantados, lesiones nodulares, lesiones satélites, adenopatía localizada
CASO CONFIRMADO DE LEISHMANIASIS CUTÁNEA O MUCOCUTÁNEA
Casos sospechoso con confirmación de laboratorio por métodos parasitológicos, histopatológicos o genéticos
INFORMACIÓN Y CONFIGURACIÓN DEL CASOTIPO DE CASO CARÁCTERÍSTICAS DE LA
CLASIFICACIÓN
CASOSOSPECHOSO DE LEISHMANIASIS VISCERAL
Toda persona con fiebre acompañada de dos o más de los siguientes signos y/o síntomas: hepatoesplenomegalia, linfadenopatía, anemia, leucopenia, trombocitopenia, emaciación y debilidad progresivas, sin verificación de laboratorio y que provenga o haya visitado área endémica
CASO CONFIRMADO DE LEISHMANIASIS VISCERAL
Caso probable que se confirma parasitológicamente amastigotes a partir de aspirado de MO o bazo o prueba de inmunofluorescencia mayor o igual a 1:32
MUERTE CONFIRMADA POR LEISHMANIASIS VISCERAL
Persona que fallece y cumple con la definición de caso confirmado de Leishmaniasis visceral, o caso sospechoso que a través de autopsia se demuestre amastigotes intracelulares en MO, bazo, hígado, GL o sangre.
DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO• Observación microscópica de frotes de borde de lesión en C y MC• Biopsias de MO, enviando al LNS para LV
DIAGNÓSTICO, OTROS MÉTODOSNOMBRE METODOLOGÍA
CULTIVO en medio bifásico NNN + Schneider suplementado con suero bovino fetal, para obtener promastigotes y lograr identificación de especies usando electroforesis de isoenzimas, Ac monoclonales, PCR
INOCULACIÓN EN ANIMALES DE LABORATORIO
Hamster dorado, para diferentes metodologías de tipificación y en la ejecución y desarrollo de proyectos de investigación
IFI suero a 4 grados C. Positiva en títulos mayores o iguales a 1:16
DIAGNÓSTICO …
BIOPSIA dividir el material obtenido en 3 fracciones, para realizar improntas y colorear el primer segmento con Giemsa, Wrigth o Field, el segundo segmento se colocará en frascos con G a 100 ug/ml para cultivos y el tercero en formol para patología
REACCIÓN DE MONTENEGRO hipersensibilidad tardía, indica contacto previo con el parásito no infección activa
BIOLOGÍA MOLECULAR
• MLST (multilocus sequence typing): para determinación de variabilidad genética y análisis de dinámica de la población.
• PCR: identificación de especies de Leishmania y de vectores , determinación de variabilidad genética
• Nested PCR
•Western Blot y ELISA: diagnóstico rápido y sencillo
BIOLOGÍA MOLECULARPRUEBA USOS EN EPIDEMIOLOGÍA Y
TAXONOMÍA
PCR tiempo real • Determinación de tasa de infección natural de especies de flebótomos (Oliveira, Macário Rebelo, Pinto Morales, & Ferreira Pereira, 2006)
• Determinación de variabilidad antigénica
• Identificación de especies de Leishmania.
• Identificación de especies de vectores
• Determinación de infecciones mixtas (Bastrenta, et al., 2002)
• Determinación de especies presentes en vector (mezclas de especies) (Frahtia-Benotmane, Mihoubi, & Picot, 2013)
• Discriminación entre los agentes etiológicos principales en LC y LV (Pita-Pereia, et al., 2012)
PRUEBA USOS EN EPIDEMIOLOGÍA Y TAXONOMÍA
MLST (multilocus sequence typing) para determinación de variabilidad genética y análisis de dinámica de la población (Marco,et al.,2015)
Western Blot y ELISA Diagnóstico rápido
• Bibliografía
• Marco, J., Barroso, P., Locatelli, F., Cajal, S., Hoyos, C., Nevot, M., y otros. (2015). Multilocus sequence typing
approach for a broader range of species of Leishmania genus: describing parasite diversity in Argentina. Infect
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• Mosleh, I., Shönian, G., Geith, E., AlJawabreh, A., & Natsheh, L. (2015). The Jordanian Mid Jordan Valley is a classic
focus of Leishamina major as reveled by RFLP of 56 isolates and 173 ITS-1-PCR postive clinical samples. Exp
Parasitol , 148, 81-85.
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Leishmania in phlebolomine snad flies in a cutaneous and visceral leishmaniasis endemic area in northeastern
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Leishamna (Leishmania) major DNA isolated from cutaneous leishmaniasis patients in Pakistan based on
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BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA• Oliveira, Y., Macário Rebelo, J., Pinto Morales, L., & Ferreira Pereira, S. (2006).
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• Pita-Pereia, D., Lins, R., Oliveira, M., Lima, R., Pereira, B., Moreira, O., y otros. (2012).
• SYBR Green-based real-time PCR targeting kinetoplast DNA can be used to discriminate between the main etiologic agents of Brazilian cutaneous and visceral leishmaniasis. Parasit Vectors , 5 (15).
• MAPAS. Protocolos nacionales de vigilancia de salud pública. guía, Centro nacional de epidemiología, Guatemala.