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UNIVERSIDAD TECNOLÓGICA DE LA SELVA
REPORTE DE ESTADÍA TITULADO “AISLAMIENTO DE BACTERIAS ACIDO
LÁCTICAS QUE CAUSAN AROMA Y SABOR DEL QUESO BOLA”, REALIZADO
EN LA CIUDAD DE OCOSINGO, CHIAPAS,
QUE PRESENTA LA
C. DAFNE ABIGAIL ALMARAZ CALVO.
COMO REQUISITO PARA OBTENER EL TÍTULO DE:
TÉCNICO SUPERIOR UNIVERSITARIO EN PROCESOS ALIMENTARIOS
ASESOR EMPRESARIAL M. en B. ANTONIO MAGDIEL
VELAZQUEZ MENDEZ
ASESOR ACADÉMICO ING. ROBINSON MARCONI VAZQUEZ
VELAZQUEZ
REVISOR ACADÉMICO
ING. LIZBETH REYES LÓPEZ
OCOSINGO, CHIAPAS, AGOSTO DE 2012
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AGRADECIMIENTOS
“A Dios, que es la luz de la vida y de la superación”
“A la Universidad de Tecnológica de la Selva, por ser un instrumento para lograr una
carrera técnica y por brindarme lo necesario para culminar esta etapa en mi
preparación como profesionista”.
“A mi asesor, Ing. Robinson Marconi Vázquez Velázquez que con sus sabios
consejos e indicaciones me dono con cariño el maravilloso tesoro del saber sin
recibir nada a cambio”.
“A cada uno de los profesores, quienes me abrigaron con cariño y respeto,
brindándome conocimientos y experiencias, haciendo de mi una persona útil y
preparada”.
“A mis padres, quienes han sido el cimiento de lo que soy y seré en la vida, quienes
de manera desinteresada me brindan oportunidades para desarrollarme como
persona y profesionista, gracias”.
“A mis hermanas, por su apoyo incondicional y motivación, que me ha permitido
seguir adelante”.
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CONTENIDO
I. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................... 5
I.1 Conceptualización de la estadía ................................................................................................ 5
I.2 Contextualización ......................................................................................................................... 6
I.2.1 Localización geográfica de la empresa (nivel estatal y municipal) ............................... 6
I.2.2 Giro y tamaño de la empresa ............................................................................................. 9
I.2.3 Área de influencia (área específica de mercado) .......................................................... 10
I.2.4 Objetivos de la empresa .................................................................................................... 11
II. DESARROLLO ............................................................................................................................ 13
II.1 Marco referencial ...................................................................................................................... 13
II.1.1. Microeconomía de la empresa ....................................................................................... 13
II.1.2 Área motivo de estudio ..................................................................................................... 14
II.1.3 Desarrollo del Objetivo (solución a un problema). ...................................................... 14
II.2 Estado del arte .......................................................................................................................... 14
II.3 Materiales y métodos ............................................................................................................... 18
II.3.1 Preparación de las muestras para el análisis (Método de la AOAC) ........................ 18
II.3.2 Determinación de Grasa por el Método de Gerber ...................................................... 19
II.3.3 Determinación de Proteína por el método de Kjeldahl ................................................ 19
II.3.4 Determinación de cenizas ................................................................................................ 20
II.3.5 Determinación de Humedad ............................................................................................ 20
II.3.6 Obtención de las muestras .............................................................................................. 21
II.3.7 Procesado de las muestras ............................................................................................. 22
II.3.8. Aislamiento y selección de las posibles cepas ............................................................ 22
II.3.9 Características morfológicas de las cepas .................................................................... 23
II.3.10 Identificación bioquímica de las bacterias ácido lácticas .......................................... 25
II.3.11. El sistema API 50 CHL .................................................................................................. 25
II.4 Procesamiento de resultados, análisis y discusión. ........................................................... 28
II.4.1 Resultados bromatológicos .............................................................................................. 28
III. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ............................................................................ 31
4
ANEXOS ............................................................................................................................................... 33
Anexo 1: Sepas aisladas ................................................................................................................ 33
Anexo 2 ............................................................................................................................................. 33
Resultados de API 50 CHL ........................................................................................................ 33
Anexo 3 ............................................................................................................................................. 34
Resultados del software ............................................................................................................. 34
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I. INTRODUCCIÓN
I.1 Conceptualización de la estadía
La estadía se refiere al tiempo en el que el estudiante permanece en una
organización ininterrumpidamente, aplicando conocimientos, habilidades y destrezas
adquiridas en los cuatrimestres anteriores cursados en la Institución, con el objetivo
de mostrar un panorama real a lo que el egresado se enfrentara al culminar un grado
académico y con miras, a obtener un trabajo, a fin con la carrera que eligió.
Realizar la estadía, implica responsabilidad y compromiso de el alumno, alumnos
deseosos de aprender y de aplicar sus propios conocimientos; como de la empresa
o institución donde laboren, mediante las facilidades que brinde para llevar a cabo
ideas, considerarlas o brindarlas; además de compartir experiencias para que el
alumno pueda adquirir conocimientos y por ultimo el apoyo que la Universidad
Tecnológica de la Selva brinda, que sin lugar a dudas el asignar un asesor para
cada alumno es fundamental, ya que juegan el papel de guías que resulta
fundamental para la realización de el proyecto.
El beneficio, resulta para todos los que forman parte; escuela, empresa y alumno.
Como escuela, permite evaluar si el aprendizaje fue significativo durante el periodo
de clases y practicas que se le impartió a la escuela; como empresa, la realización
de cada proyecto surge con el objetivo de ayudar mediante la mejora, detección de
problemas que permiten mejorar, hasta la innovación; y por ultimo y mas importante,
el alumno, se enfrenta a la vida real como profesionista, obtiene experiencia y
comienza abrir un panorama mayor, del área a la que quiere dirigirse.
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I.2 Contextualización
I.2.1 Localización geográfica de la empresa (nivel estatal y municipal)
Nivel Estatal
Chiapas, estado situado en el sureste de México, al este del istmo de Tehuantepec,
dentro de la región Pacífico Sur. Limita por el norte con el estado de Tabasco, por el
este con Guatemala (comparte la Frontera Sur), por el sur y sureste con el golfo de
Tehuantepec del océano Pacífico, y por el oeste con los estados de Veracruz y
Oaxaca. Ocupa el 8º lugar en el conjunto del país en cuanto a extensión territorial
que es de 75,634 km, representa el 3.8% de la superficie del país.
Chiapas se sitúa entre los paralelos 14º 32’ al sur y 17º 59’ de latitud norte y los
meridianos 90º 22’ al este y 94º 15’ de longitud oeste.
La Universidad Tecnológica de la Selva se encuentra ubicada en la ciudad de
Ocosingo, Chiapas. El municipio de Ocosingo es el más extenso del Estado y
actualmente el número 27 entre los municipios de mayor superficie en el país.
(Juarez, D. 2011)
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Fig. 1 Localización de la Universidad Tecnológica de la Selva en el municipio
de Ocosingo; Chiapas.
Fuente: modificado de http://commons.wikimedia.org/wiki/File:Ocosingo_-_Chiapas.PNG
Chiapas
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Nivel Municipal
La Universidad Tecnológica de la Selva se encuentra ubicada en la ciudad de
Ocosingo, Chiapas. Se localiza en la carretera Ocosingo –Altamirano, entronque
Tonina Km 0.5.
Fig. 2 Ubicación de la empresa a nivel Municipal (Fuente).
Fuente: INEGI, Abril 2011.
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I.2.2 Giro y tamaño de la empresa
La UT Selva en el que a través de la administración de sus recursos, del capital y del
trabajo, se producen bienes y/o servicios educativos tendientes a la satisfacción de
las necesidades de la comunidad estudiantil. De acuerdo a la prestación que brinda
esta casa de estudios indican que su giro pertenece a Servicios de educación pública
descentralizado donde el capital pertenece al Estado y generalmente su finalidad es
satisfacer las necesidades de carácter social en la cual se desarrollan actividades
que competen al Estado y que son de interés social, pero que está dotando
personalidad y patrimonio. (Juarez, D. 2011)
La Universidad Tecnológica de la Selva ha crecido enormemente durante los últimos
años, aumentando el números de empleados a 200 aproximadamente que elaboran
en esta institución y ascendió el número de estudiantes a 2,000 aproximadamente.
La Universidad Tecnológica de la Selva es una institución que oferta servicios
educativos de calidad, al estar evaluada, acreditada y certificada bajo la norma ISO
9001-2008.
La norma ISO 9001-2008 tiene como objetivo llegar a un consenso con respecto a
las soluciones que cumplan con las exigencias comerciales y sociales (tanto para los
clientes como para los usuarios). Esta norma se cumple de forma voluntaria ya que
la ISO, siendo una entidad no gubernamental. No cuenta con la autoridad para exigir
su cumplimiento. (Normas 9000, 2003).
En la actualidad la Universidad Tecnológica de la Selva imparte educación de nivel
superior de tipo tecnológico para formar técnicos superiores universitarios, ingenieros
técnicos e ingenieros competentes y comprometidos con el desarrollo
socioeconómico de la entidad.
La estructura organizacional de la Universidad contempla los siguientes
departamentos para la administrar eficientemente de sus recursos: Administración y
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Finanzas, Vinculación, Planeación y Evaluación, Servicios Escolares, Servicios
Bibliotecarios, Sistema de Gestión de la Calidad, y Servicios Generales y control
patrimonial. Conjuntamente la gestión educativa se delega en cuatro divisiones:
División de Tecnologías de la Información, Carrera de Administración Área Empresas
Turísticas, Carrera de Administración y Evaluación de Proyectos y División de Agro-
alimentos. Con un total aproximado de 200 colaboradores, la Universidad.
I.2.3 Área de influencia (área específica de mercado)
El área de influencia de la Universidad Tecnológica de la selva Comprende cuatro
regiones económicas, con 28 municipios, a saber: I centro, II Altos, III Fronteriza y IV
Selva. Dentro de estas regiones económicas, se encuentran inmersos los siguientes
municipios: Venustiano Carranza, Altamirano, Amatenango del valle, Chalchihuitan,
Chamula, Chanal Chenalho. Huistán, La raizar, Mitoctic, Oxchuc, Pantelhó, Las rosas
San Cristóbal de las casa, Tenejapa, Teopisca, Zinacantan, Comitán; Las margaritas,
Chilón, Ocosingo, Palenque, Sabanilla, Sitalá, Tila, Tumbalá, Ya jalón y San Juan
Cancúc. Tiene 27,842.3 Km², que es 36% de la superficie Estatal.
Generalmente los alumnos que ingresan a la Universidad provienen de familias de
bajo y medio nivel; de las instituciones como: COBACH, CBTA, CECYT, CBTIS,
TELEBACHILLERATO, CEBACH Y Preparatorias Particulares. (Juarez, D. 2011).
Gracias a la certificación de la Universidad Tecnológica ha obtenido un gran auge en
la red nacional de Universidades Tecnológicas, logrando obtener importantes
terrenos en el campo laboral en todo el sureste mexicano y parte del centro. Por tal
motivo, muchos alumnos chiapanecos se brindan la oportunidad de estudiar en tan
reconocida Institución.
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I.2.4 Objetivos de la empresa
Objetivo general
Ofrecer a los egresados de nivel medio superior, servicios educativos de calidad
certificada, que aseguran el compromiso del personal docente, administrativo y
directivo para la mejora continua en la formación de Técnicos Superiores
Universitarios.
Objetivos específicos
Impartir una educación integral que aspire siempre a la excelencia en lo científico
y tecnológico complementando una formación humanística.
Mantener una vinculación con el sector productivo, que se dará desde la
incorporación del sector en el cuerpo de gobierno de la institución, hasta en la
determinación de requerimientos de empresas y organismos para la creación de
nuevas carreras, programas de investigación y educación continua.
Conservar relaciones armónicas con el sector económico, público y social,
procurando una participación constante y permanente mediante la aportación de
alternativas de solución a sus problemas, a través de sus funciones sustantivas y
de acuerdo a su capacidad y recursos.
Adoptar estructuras administrativas, académicas y jurídicas que le permitan
realizar sus funciones con eficiencia y eficacia, y que le permitan adecuarse a los
requerimientos del momento histórico que vive.
Planear a corto, mediano y largo plazo, serán instrumentos que siempre guiarán
las acciones y actividades de la Universidad.
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Tomar en cuenta el principio de excelencia académica, ofreciendo oportunidad de
formación a los jóvenes, sin importar su condición económica, política o social, sin
más limitaciones que la capacidad derivada de sus recursos de profesores y
planta física.
Ser un reto permanente para sus administradores el mantener el equilibrio
financiero, revisando anualmente las cuotas fijadas para la prestación de
servicios, logrando la participación de los Gobiernos Federal y del Estado de
Chiapas, e incentivando la colaboración del sector productivo.
Misión
Formar Técnicos Superiores Universitarios de excelencia, comprometidos con el
desarrollo socioeconómico de le Entidad mediante la presentación de servicios
educativos de la calidad certificada.
Visión
Ser una institución de excelencia en la Formación de Técnicos Superiores
Universitarios creativos y emprendedores, que promuevan el desarrollo rural del
Estado de Chiapas.
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II. DESARROLLO
II.1 Marco referencial
II.1.1. Microeconomía de la empresa
La Universidad Tecnológica de la Selva es una institución educativa de carácter
público y, gracias a esta ultima característica a recibido durante estos últimos años
una gran cantidad de apoyos por parte de tanto el gobierno federal como estatal.
Esto ha dado como resultado el desarrollo rápido e impresionante de esta
universidad, tanto en estructura y calidad, educativa catapultándola a ser la máxima
casa de estudios de la región selva de Chiapas, así como una de las principales en
todo el estado.
Por otra parte, la Universidad tecnológica de la Selva tiene una gran cantidad de
convenios firmados que la vinculan con muchas empresas y universidades tanto a
nivel estatal, nacional e internacional.
Todas estas razones le dan nuestra universidad una gran competitividad con la cual
puede competir con muchas otras universidades de todo el país y la coloca como
una de las principales a nivel estatal
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II.1.2 Área motivo de estudio
Debido a que el queso bola producido en Ocosingo posee características propias que
lo diferencian de otros productos lácticos; surge la idea de aislar las bacterias lácticas
que intervienen en su maduración y son causantes de su propio sabor y aroma; así
mismo, continuar con el estudio de este producto y brindar información necesaria
para posteriores trabajos.
II.1.3 Desarrollo del Objetivo (solución a un problema).
Actualmente el queso de bola de Ocosingo presenta características sensoriales
singulares debido al proceso de maduración que sufre el queso por 21 días, con la
presente investigación se lograra identificar las bacterias ácido lácticas que causan el
aroma y el sabor al queso.
II.2 Estado del arte
El queso de bola de Ocosingo es un producto característico del municipio de
Ocosingo, Chiapas. El proceso de elaboración de este derivado lácteo es herencia
de conocimientos ancestrales que le confieren características particulares pero que
también han dado lugar a la creación de una amplia gama de sabores, formas y
tamaños. La producción actual de este producto se lleva a cabo a nivel artesanal, a
partir de leche sin pasteurizar, sin la adición de cultivos iniciadores, la maduración
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ocurre por un proceso natural a temperatura ambiente y en frío, consta de dos
partes: una interna de queso crema madurado y una externa o forro doble de pasta
hilada.
El queso de bola de Ocosingo es un queso con identidad propia, producido en
Ocosingo Chiapas México de manera artesanal, este queso presenta características
distintivas debido a la calidad de la leche y a las condiciones climáticas de la región
que ayudan a diferenciar la flora microbiana presente en cada una de las etapas de
elaboración del queso, incluyendo la maduración el queso crema a los 21 días.
Como la mayoría de los quesos artesanales, el queso “bola de Ocosingo” se elabora
con leche cruda lo cual conlleva el riego potencial de desarrollar enfermedades como
brucelosis, botulismo, tuberculosis, (CDC, 2005) u otras asociadas a lácteos no
pasteurizados. Pese a que hace más de 15 años se publicó la Norma Oficial
Mexicana 121-SSA1-1994, donde se establece que la elaboración de cualquier
queso debe llevarse a cabo con leche pasteurizada; solo recientemente se ha puesto
gran interés en esta actividad, bien por cumplir las regulaciones sanitarias o con
miras a comercializar los productos en otros países donde tienen gran aceptación,
como lo es el mercado de los EU donde para 2004 se fabricaron 142 millones de
libras de queso estilo hispano (Van Hekken et al., 2006). La principal razón para
continuar fabricando queso sin pasteurizar la leche es que, al realizar este proceso
en la leche las características organolépticas del queso de bola de Ocosingo se
modificarían (Centeno et al., 1996; Méndez et al., 1998).
Es indudable entonces que la pasteurización de la leche es una etapa que se debe
tener como un punto crítico de control (PCC), para asegurar que los
microorganismos patógenos presentes sean destruidos, sin embargo para esto debe
contarse con cultivos o fermentos lácticos, que puedan desarrollarse en forma rápida,
para que por competencia puedan reducir los posibles microorganismos indeseables,
además de conferir las características propias del producto, tales microorganismo
son conocidos como iniciadores y se definen como preparaciones que contienen
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microorganismos vivos aplicados con el objeto de hacer uso de su metabolito
microbiano (Hammes, 1990), estos cultivos están constituidos por bacterias ácido
lácticas y principalmente pertenecientes a los géneros Lactococcus, Lactobacillus y
Leuconostoc. La primera y principal función de estos es la formación de ácido
orgánicos, tanto no volátiles como el ácido láctico y volátiles principalmente el ácido
acético (Cox, 1997).
BAL (Bacterias Ácido Lácticas)
El término bacterias lácticas engloba a un grupo heterogéneo de microorganismos
cuya característica definitoria es la producción de ácido láctico a partir de la
fermentación de azúcares. Las bacterias lácticas se han venido utilizando
inadvertidamente durante miles de años para la producción de alimentos tales como
queso y yogur. Sin embargo, no fue hasta mediados del siglo XIX cuando Louis
Pasteur demostró que la producción de ácido láctico en fermentaciones se debía a la
acción de microorganismos (fermentos lácticos). El aislamiento y obtención de un
cultivo puro de Bacterium lactis por Joseph Lister marcó el inicio del estudio
microbiológico de las bacterias lácticas. En 1900 Henry Tissier aisló de las heces de
un lactante la primera bifidobacteria a la que llamó Bacillus bifidus. Se trataba de un
organismo Gram positivo y productor de ácido láctico por lo que en la primera
clasificación se incluyó con las bacterias lácticas. En 1917 Winslow propuso la familia
Lactobacillaceae para agrupar bacterias con los siguientes rasgos: bacilos Gram
positivos, a menudo largos y delgados, inmóviles, no esporulados, comúnmente
producen ácido láctico a partir de azúcares, pueden producir gas (dióxido de
carbono), no producen hidrógeno, ocasionalmente termófilos, difícilmente cultivables
en medio gelificado incubado en atmósfera microaerófila. Dentro de esta familia se
incluía Bacillus bifidus.
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Clasificación de las BAL
La clasificación de las BAL en géneros diferentes es basada en principio en la
morfología, modo de fermentación de la glucosa (homofermentativas y
heterofermentativas), el crecimiento a diferentes temperaturas, la configuración del
ácido láctico producido habilidad para crecer a alta concentración de sal y tolerancia
ácida o alcalina. En la naturaleza existen los siguientes géneros: Aerococcus,
Alloinococcus, Carnobacterium, Dolosigranulum, Enterococcus, Globicatella,
Lactobacillus, Lactococcus, Lactosphaera, Leuconostoc, Oenococcus, Pediococcus,
Stresptococcus, Tetragenococcus, Vagococcus y Weisella (Axelsson, 1998; Carr y
col., 2002).
Características de Lactobacillales
Las bacterias lácticas propiamente dichas pertenecen a 19 géneros distribuidos en 6
familias dentro del orden Lactobacillales. Forman un grupo muy heterogéneo de bajo
contenido en G+C dentro del filo Firmicutes. La mayor parte de estas bacterias
comparten el hecho de ser bacilos o cocos Gram-positivos, catalasanegativos
(aunque en algunos casos pueden presentar una actividad pseudocatalasa),
anaerobios facultativos, microaerófilos o aerotolerantes, desprovistos de citocromos,
no esporulados, acidófilos o acidotolerantes, de metabolismo quimioorganotrofo y
estrictamente fermentativo produciendo ácido láctico como principal producto final de
la fermentación de azúcares. Los géneros con morfología celular esférica, o cocoide
“cocos” son entre otros, Lactococcus, Leuconostoc, Oenococcus, Pediococcus o
Streptococcus, con número de especies limitado, y el género que reúne mayor
número de especies, Lactobacillus, se caracteriza por la forma de bastoncillo
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“bacilos”. actualidad son más de 100 las especies que han sido descritas como
pertenecientes al género Lactobacillus y se encuentra en continuo aumento.
La principal característica del metabolismo de las bacterias lácticas es la
fermentación de los azúcares, siendo su producto final, en la mayor parte de los
casos, el ácido láctico. Pueden fermentar hexosas como glucosa, manosa, galactosa
o fructosa utilizando la llamada "vía homofermentativa", en la que el único producto
final es ácido láctico, o la "vía heterofermentativa" en la que, además de ácido
láctico, se forman etanol (o ácido acético) y CO2. La utilización de una u otra vía
depende de la presencia de los enzimas que intervienen en la transformación del
azúcar en ácido, la fructosa-1,6-bifosfato-aldolasa en el primer caso, y una
fosfocetolasa, en el segundo.
Los productos derivados del metabolismo de las bacterias lácticas tienen un papel
decisivo y les confieren sus características distintivas a gran variedad de alimentos
tales como yogur, queso y otros productos lácteos fermentados, encurtidos,
etc.
II.3 Materiales y métodos
II.3.1 Preparación de las muestras para el análisis (Método de la AOAC)
Los quesos fueron llevados al laboratorio y en ese momento se procedió a la
preparación de las muestras: Cortar una capa del forro para dejar expuesto el queso
crema, marcando un triangulo, sacar el queso crema de todo el triangulo, vaciando
hasta el fondo del queso. Partir en trozos pequeños con cuchillo. Se homogeneizo la
muestra y se procedió a realizar el análisis bromatológico proximal.
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II.3.2 Determinación de Grasa por el Método de Gerber
Se tapa por la parte estrecha el butirometro para queso; se le añaden 15 ml del ácido
sulfúrico y agua a 40°C hasta formar una capa de 6 mm de espesor sobre el ácido.
Se pesan 3 g de queso en el tubo que tiene un tapón y se inserta en el butirometro;
se añade 1 ml de alcohol isoamilico y se añade más agua hasta 5 mm debajo del
borde del butirometro, se mezcla hasta la disolución de la muestra y se coloca en
un baño de agua a 65°C durante 10 minutos. Se saca y centrifuga a 1100 rpm; se
regresa al baño 5 minutos y se lee el porcentaje de grasa en la columna graduada.
II.3.3 Determinación de Proteína por el método de Kjeldahl
Pesar exactamente sobre un papel tarado 5 gramos de la muestra seca o húmeda,
se dobla el papel cuidando no tirar su contenido se pasa al fondo del matraz kjeldahl
seco. Se le agregan proporcionalmente 0.1 a 0.5 g de sulfato cúprico como
catalizador; de 10 a 70 ml de ácido sulfúrico concentrado y de 3.3 a 25 g de sulfato
de potasio para elevar el punto de ebullición del ácido e impedir que se pierda
rápidamente por el calentamiento. Se coloca el matraz en un dispositivo para la
eliminación de gases o en un campana; se calienta al principio lentamente y después
enérgicamente, girándolo ocasionalmente, se continua calentando hasta su oxidación
completa, punto donde la mezcla forma un sólido incoloro o una solución de color
azul claro. Es necesario extraer la grasa antes de la digestión. Terminada la digestión
se deja enfriar el matraz kjeldahl, se le añade aproximadamente 200 ml de agua y
algunos cuerpos de ebullición, una gota de fenolftaleina y un poco de antiespumante.
Llevar a cabo la destilación de la mezcla hasta que una gota del destilado no cambie
el papel tornasol rojo. Valorar el destilado por titulación y calcular la cantidad de
proteína presente en el queso.
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II.3.4 Determinación de cenizas
Se determina por calcinación de la muestra en mufla según el método de la AOAC.
Se puso a peso constante un crisol o cápsula de porcelana por cada muestra que se
analizo, lo cual significo dejarlo durante 15 minutos en la mufla a una temperatura de
550° a 600°C y se dejo enfriar el crisol en un desecador durante 15 a 20 minutos.
Posteriormente, se peso el crisol en balanza analítica y se registro el dato.
Sobre un crisol se pesaron 1-2 gramos de la muestra, la cual fue preincinerada ;
exponiéndola a la flama del mechero de bunsen y posteriormente se incinero la
muestra en la mufla precalentada entre 550° y 600°C durante 2 horas. Por ultimo, se
peso el crisol con cenizas.
% de Cenizas en base seca = P3 – P1 *100
P2 – P1
P1 = Peso de la cápsula
P2 = Peso de a muestra
P3 = Peso de cápsula con muestra calcinada
II.3.5 Determinación de Humedad
Por determinación de materia seca según el método de la AOAC
Se puso a peso constante una charola de aluminio y se registró el peso,
posteriormente se pesaron de 3-4 gr de muestra sobre la charola en una balanza
analítica y se puso a secar la muestra a 120°C durante 2 horas.
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Al transcurrir el tiempo, se sacaron las muestras y se dejaron enfriar dentro de un
desecador durante 10 minutos, se realizo la primera pesada y así sucesivamente
hasta alcanzar peso constante.
Al finalizar se calculo el % de humedad mediante la siguiente fórmula:
P2 – (P3 – P1) X 100 = % de Humedad
P2
En donde:
P1 = Peso de charola
P2 = Peso de muestra
P3 = Peso de muestra seca + crisol
II.3.6 Obtención de las muestras
Las muestras de queso bola de Ocosingo fueron obtenidas en las empresas
productoras de Queso de Bola Ocosingo (Queso de Doble Crema):
Quesos La Regional
Quesos Santa Rosa
Una vez obtenidas las muestra, adecuadamente identificadas y acompañadas de las
fichas correspondientes, se procedió a su envío en condiciones controladas de
refrigeración hasta el laboratorio de Microbiología de la Universidad Tecnológica de
la Selva para su posterior análisis.
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II.3.7 Procesado de las muestras
1. De las muestras a analizar se pesaron sobre un vidrio de reloj asépticamente 10 g
y se homogenizaron en 90 mL de citrato de sodio (pH 8.75) al 2% (Fitzimons et
al., 1999).
2. Se realizaron diluciones seriadas hasta 10-8 y se sembraron por duplicado en
placas Petri conteniendo medios selectivos para bacterias ácido lácticas
(dilusiones, 10-5, 10-6, 10-7 y 10-8: medio MRS (Alvarado et al., 2007) para
Lactobacillus incubada a 37°C y agar M17 (Alvarado et al., 2007) para
Lactococcus incubado a 25°C, con la técnica de vaciado en placas, (hasta 5
días).
3. Las colonias seleccionadas se sembraron en caldo (siembra por picadura) MRS
para Lactobacillus o Elliker para Lactococcus incubándose a 37°C por 24 h.
4. Posteriormente, al obtener resultados (Anexo 1), las bacterias fueron aisladas
mediante siembras por el método de estría cruzada y se formo una colección de
12 cepas de Bacterias Ácido Lácticas.
II.3.8. Aislamiento y selección de las posibles cepas
A partir de las cepas aisladas de las muestras de leche y de queso de bola se
procedió a la selección en base a su pureza de las placas específicas para este
género de bacterias.
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II.3.9 Características morfológicas de las cepas
Las pruebas iniciales podemos diferenciales en:
Observación macroscópica de las colonias.
Tinción de Gram.
II.3.9.I Observación macroscópica de la colonia
Las colonias pueden ser diferenciadas con base a las características morfológicas a
partir de cultivos puros.
En la tabla N° 1 características a considerar en la diferenciación de una colonia
bacteriana.
No CARACTERISTICAS OBSERVACIONES
1 FORMA Puntiforme, circular, irregular, alargada, fusiforme,
filamentosa, rizoide.
2 TAMAÑO Estimar el diámetro en mm (pequeña, mediana,
grande)
3 SUPERFICIE Lisa, granulosa, filamentosa, ondulaciones.
4 ELEVACION Aplanada, elevada, pulvinada, convexa, embonada,
umbilicada
5 BORDE Continuo, ondulado, lobulado, erosionado, festonado,
filamentoso.
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6 FORMA DE
CRECIMIENTO
Filiforme, punteada, espinosa, arborescente,
granulosa, rizoide.
7 COLORACION
Según sea observado por la luz reflejada o por la luz
transmitida, puede ser blanco, amarillo, rojo ladrillo,
anaranjado, etc.
8 OPACIDAD Transparente, opaca, etc.
9 CONSISTENCIA Dura, viscosa, membranosa, gelatinosa, mucosa, etc.
Se determina mediante el asa de Nicrom
II.3.9.2 Tincion de Gram
1. Se extiende una colonia bacteriana sobre un cubreobjetos con una gota de agua
y se fija en la llama.
2. Se realiza la tinción con el primer colorante (violeta de genciana) y se deja en
contacto 1 minuto. Se lava con agua, eliminando el exceso de colorante.
3. Se añade lugol y se mantiene en contacto durante 1 minuto. Nuevamente se lava
con agua y se trata con alcohol – acetona.
4. Posteriormente se añade safranina durante 1 minuto (colorante de contraste). Se
seca a calor suave y se procede a la observación bajo microscopio óptico.
El fundamento radica en las diferencias estructurales de la pared celular de ambos
grupos bacterianos. Las bacterias Gram positivos tienen una gruesa capa de
peptidoglicano en su pared, mientras que las bacterias Gram negativas tienen una
capa de peptidoglicano más fina y una capa de lipopolisacarida externa.
25
Al añadir alcohol –acetona se arrastrara el colorante sólo en las Gram negativas,
mientras que en las Gram positivas queda retenido y las células permanecerán de
color violeta. Las células Gram negativas se teñirán de color rosado por el colorante
de contraste utilizado (safranina).
II.3.10 Identificación bioquímica de las bacterias ácido lácticas
Todas las cepas seleccionadas fueron transferidas al medio de cultivo, MRS con
campana de Durham para cepas del genero Lactobacillus y M17 con tubos Durham
para cepas del genero Lactococcus, se incubaron a 30°C por 48 h, para evaluar la
formación de burbujas, que fueron considerados como positivos a la formación de
CO2.
II.3.11. El sistema API 50 CHL
Este sistema fue usado para la identificación bioquímica de Lactobacillus.
Principio
La galería API 50 CH esta compuesta por 50 microtubos y permite el estudio de la
fermentación de substratos pertenecientes a la familia de hidratos de carbono y
derivados (heterosidos, polialcoholes, ácidos uronicos).
Durante el periodo de incubación, la fermentación se traduce en un cambio de color
en el tubo debido a una producción de ácido en anaerobiosis revelada por el
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indicador de pH del medio elegido. El primer tubo, sin principio activo, sirve como
testigo negativo.
Preparación de las galerías
Cada galería esta constituida por 5 filas conteniendo cada una 10 tubos numerados
Preparar una cámara de incubación
Anotar la referencia de las cepas
Repartir unos 10 mL de agua destilada o desmineralizada en los alvéolos el
fondo para crear una atmósfera húmeda.
Sacar cada una de las filas de su embalaje, separar en dos las filas 0-19 y 20
-39 y colocarlas en el fondo de la cámara de incubación
Completar la galería con la fila 40 – 49.
Preparación del Inóculo
Cultivar el microorganismo sobre un medio adecuado para su crecimiento.
Verificar la pureza de la cepa, mediante la diferenciación correspondiente a su
morfología colonial.
Tomar este cultivo mediante escobillon en un medio sólido, o mediante la
centrifugación en un medio liquido.
Preparar e inoculo en el medio apropiado, la suspensión debe ser utilizado de
inmediato.
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Inoculación de las galerías
Repartir la suspensión bacteriana con la ayuda de una pipeta estéril en los 50 tubos
de la galería teniendo en cuenta las precauciones siguientes:
Inclinar ligeramente hacia delante la cámara de incubación.
Evitar a formación de burbujas apoyando la punta de la pipeta en el borde de la
cúpula.
Cuando solo se inocule el tubo, no rebasara el límite superior del mismo con el fin
de conservar una buena anaerobiosis.
Cuando el tubo y la cúpula deban llenarse completamente, evitar la formación de
un menisco cóncavo o convexo.
Incubar las galerías a la temperatura óptima de crecimiento del grupo de
microorganismos estudiado: 30°C, 37°C, 55°C.
Lectura e interpretación
La lectura de las galerías se realiza con tiempos de incubación definidos (24 h 48 h)
dependiendo del microorganismo y del tipo de reacción estudiada. (Anexo 2)
Interpretación
Interpretar cada resultado positivo (+), negativo (-), dudoso (?) y anotarlo en la hoja
de resultados. (Anexo 3)
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II.4 Procesamiento de resultados, análisis y discusión.
II.4.1 Resultados bromatológicos
Tabla No. 2: Composición del Queso de Bola de Ocosingo
MUESTRA HUMEDAD (%) CENIZA (%) GRASA (%) PROTEINA (%)
QUESO SANTA ROSA
1° 33.86 2.08 38.86 21.56
2° 34.03 2.01 38.73 21.62
QUESO REGIONAL
1° 34.47 2.13 38.65 20.86
2° 34.09 2.02 38.21 20.74
En la tabla se presenta la composición del queso crema, parte interior del queso
Bola Ocosingo. La muestra corresponde a 2 productores principales de este
queso en el municipio de Ocosingo Chiapas.
Los resultados se aprecian variaciones mínimas entre una muestra y otra esto se
debe a la materia prima obtenida en las queserías proceden de diferentes tipos
de ranchos y razas de vacas.
II.4.2 Resultados microbiológicos
II.4.2.1 Observación macroscópica
Tabla No. 3: Morfología colonial
Nombre Forma Superficie Elevación Borde Forma de
crecimiento Color Opacidad Consistencia
Qs 1 Circular Lisa Convexa Entero Puntiforme Amarillo Opaca Gelatinosa
Qs 2 Circular Lisa Convexa Entero Puntiforme Beige Opaca Gelatinosa
Qs 3 Circular Lisa Convexa Entero Puntiformes Amarillo Opaca Gelatinosa
Qr 1 Circular Lisa Convexa Entero Puntiformes Amarillo Opaca Gelatinosa
Qr 2 Circular Lisa Convexa Entero Puntiformes Amarillo Opaca Gelatinosa
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En la tabla 3 se presentan los resultados de las sepas seleccionadas en base a
su pureza y mayor diferenciación entre una y otras, con el objetivo de identificar el
mayor numero de bacterias diferentes.
II.4.2.2 Observación microscópica y formación de gas:
Tabla No. 4
Nombre Forma Afinidad Gram Formación de gas
Qs1 Cocos Dudoso (+)
Qs2 Bacilos Dudoso (+)
Qs3 Bacilos Dudoso (+)
Qr1 Bacilos Dudoso (+)
En la tabla 4 se presentan los resultados que se le realizo a cada sepa
seleccionada con anterioridad.
La morfología y la formación de gas debido a la fermentación de carbohidratos
realizada por las bacterias, nos da pauta a continuar con las pruebas bioquímicas,
para su identificación final; sin embargo, el resultado de la tinción no es el
esperado, ya que deberían teñirse de color violeta y la coloración que presentaron
no fue tal cual; pudiéndose deber a la calidad de los reactivos con que se realizo
la tinción (caducidad y/o pureza).
II.4.2.3 Resultado en API 50 CHB
Nombre Nombre de bacteria
Qs1 Perfil inaceptable
Qs2 Lactobacillus plantarum
Qs3 Lactobacillus acidophilus
Qr1 Lactobacillus delbrueckii ssp delbrueckii
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Los resultados en el API 50 CHB, permitieron identificar error en la tinción, ya que
el crecimiento de las bacterias se dio en el lapso establecido, obteniendo
resultados positivos de los sustratos fermentados por las bacterias ácido lácticas.
El perfil inaceptable que nos refleja el API 50 CHL en el Qs1, se debe a que la
pureza de la colonia seleccionada no es del 100%; ya que, refleja dentro de las
galerías resultados positivos en lugar de negativos
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III. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
Las bacterias ácido lácticas son las responsables del aroma, sabor y textura del
queso de Bola de Ocosingo debido a la lipolisis y proteólisis en los componentes del
queso.
Lactobacillus plantarum, Lactobacillus acidophilus y Lactobacillus delbrueckii ssp
delbrueckii son las BAL presentes en el queso bola de Ocosingo.
Realizar un cultivo iniciador para agregarlo a la leche si se quiere realizar un queso
de Bola de Ocosingo con leche pasteurizada.
Recomendaciones
Es necesario mencionar que para corroborar la identificación de las especies antes
mencionadas, deberá realizarse la identificación mediante técnicas moleculares.
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BIBLIOGRAFÍA
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and lactobacilli.
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la leche y tecnología de los productos lácteos. España: Acribia S.A.
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ANEXOS
Anexo 1: Sepas aisladas
Anexo 2
Resultados de API 50 CHL
Medio M17
Muestra Qs1
Medio M17
Muestra Qs2
Medio MRS
Muestra Qr1
Qs1 Qs2