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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO FACULTAD DE CIENCIAS Optimización del método de formación de un azo compuesto para la detección de nitrógeno oxidado en suelos con alto contenido de nitratos y su aplicación en el desierto de Atacama. Implicaciones astrobiológicas. T E S I S QUE PARA OBTENER EL TÍTULO DE: B I Ó L O G A P R E S E N T A: LAURA ESQUIVEL HERNÁNDEZ DIRECTOR DE TESIS: Dr. Rafael Navarro González Laboratorio de Química de Plasmas y Estudios Planetarios Instituto de Ciencias Nucleares México D.F. 2016
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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE

MÉXICO

FACULTAD DE CIENCIAS

Optimización del método de formación de un azo compuesto para la detección de nitrógeno oxidado en

suelos con alto contenido de nitratos y su aplicación en el desierto de Atacama. Implicaciones astrobiológicas.

T E S I S

QUE PARA OBTENER EL TÍTULO DE: B I Ó L O G A

P R E S E N T A:

LAURA ESQUIVEL HERNÁNDEZ

DIRECTOR DE TESIS:

Dr. Rafael Navarro González Laboratorio de Química de Plasmas y Estudios

Planetarios Instituto de Ciencias Nucleares

México D.F. 2016

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Agradecimientos institucionales

El presente trabajo se realizó en el Laboratorio de Química de Plasmas y

Estudios Planetarios en el Instituto de Ciencias Nucleares de la Universidad Nacional

Autónoma de México, bajo la asesoría del Dr. Rafael Navarro González, con los

apoyos de los proyectos PAPIIT IN106013, IN109416, PAPIME PE103216, y

CONACyT 220626.

Agradezco al Dr. Rafael Navarro González por permitirme estar en su

laboratorio, así como la orientación proporcionada en el desarrollo de este trabajo.

Agradezco al Dr. Ary Rodríguez González por el apoyo de una beca a través

del Proyecto PAPIIT IA103115

A los integrantes de mi jurado por el tiempo proporcionado y sus valiosos

comentarios y aportaciones a esta tesis.

A la Q. Paola Molina Sevilla por todo el tiempo, apoyo y orientación que me

brindó siempre que lo necesité.

Al M. en C. José de la Rosa Canales por sus valiosas observaciones y

comentarios.

A Pablo Martínez Sosa por su tiempo, explicaciones y paciencia en esta tesis.

Al Instituto de Ciencias Nucleares de la UNAM del cual formo parte como

alumna asociada.

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Agradecimientos Personales

A mis queridos padres, ustedes me ayudaron a ser la persona que soy

ahora, estando a m i lado, apoyando todas mis locuras y son quienes han

servido de guía al enseñarme a creer en mí.

A mis hermanos y sobrinos, porque aun con todas las diferencias

siguen estando cuando los necesito.

A mis queridos amigos: Daniela con quien compartí grandes

experiencias dentro y fuera de las aulas, estos 4 años no habrían sido lo mismo

sin ti. A ti Diego por todas esas increíbles platicas que me impulsaron a

continuar hasta llegar a la meta y claro por la m aravillosa amistad que hemos

forjado en los últi mos años. A mi confidente Suky por todos estos año s de

gran amistad, pues aunque no viva en este planeta estas a mi lado sin importar

nada, ni nadie.

A mis compañeros del laboratorio, quienes siempre tenían algo que

decir y con quienes me divertí aprendiendo sobre química, física, matemáticas,

divulgación de la ciencia y la vida en general.

A mi grupo de creadores, quienes me enseñaron que el subir montañas

es el principio de nue vas aventuras. A Armando y Axel por darme las

herramientas para enfrentar mis mayores miedos.

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ÍNDICE

RESUMEN

1. ANTECEDENTES

1.1 El nitrógeno 2

1.2 Ciclo del nitrógeno en la Tierra 3

1.3 La importancia de los nitratos en la Tierra 9

1.4 La importancia de los nitratos para la búsqueda de vida en

Marte 10

1.5 Desiertos 13

1.5.1 Suelos análogos a Marte 16

1.6 Astrobiología 19

1.6.1 Misiones espaciales a Marte 21

1.6.1.1 Misión Curiosity 23

1.6.2 El desierto de Atacama como análogo de Marte 25

1.6.3 Razones para estudiar el nitrato en Marte 28

2. OBJETIVOS

2.1 Generales 30

2.2 Particulares 30

3. HIPÓTESIS 31

4. METODOLOGÍA

4.1 Colecta de muestras 32

4.2 Colorimetría 35

4.3 Preparación de muestras 35

4.3.1 Extracción de sales solubles 36

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4.3.2 Reducción de nitrato a nitrito 37

4.3.3 Formación de la sal de diazonio 37

4.3.4 Curva de calibración de nitratos 38

5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

5.1 Curva de calibración 40

5.2 Limites de detección y cuantificación 41

5.3 Análisis de nitratos de suelo en un transecto norte-sur 42

5.4 Variación de nitratos en la zona de Yungay con respecto a

la profundidad 48

5.4.1 Modificación de la técnica colorimétrica para la

determinación de nitratos en altas concentraciones 50

6. CONCLUSIONES 53

7. PERSPECTIVAS 56

8. REFERENCIAS 58

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ÍNDICE DE FIGURAS

1. Ciclo biótico y abiótico del nitrógeno 4

2. Posible mecanismo de formación de nitrato en Marte 11

3. Distribución de los vientos alrededor de la Tierra 15

4. Mapa de Sudamérica 26

5. Mapa digital del desierto de Atacama en el norte de Chile 33

6. Ubicación de los sitios de colecta de las muestras 34

7. Aparato de filtración 36

8. Reacciones para la formación de un compuesto azo 38

9. Curva de calibración de nitratos 41

10. Muestras del transecto norte en el desierto de Atacama 46

11. Muestras del transecto sur en el desierto de Atacama 47

12. Grafica de concentración de nitratos al aumentar la profundidad 50

13. Prueba para d eterminar la concentración en la que se forman

flóculos que interfieren en la deter minación colorimétrica de

nitratos

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ÍNDICE DE TABLAS

1. Composición atmosférica del aire seco 8

2. Eras geológicas de Marte 12

3. Principales desiertos del mundo por continente 13

4. Principales suelos análogos a Marte 19

5. Ubicación de las muestras 32

6. Curva de calibración de nitratos 39

7. Análisis de nitratos en el transecto norte-sur del desierto de Atacama

43

8. Análisis de nitratos, en un perfil, hasta 60 cm de profundidad de la muestra de Yungay.

48

9. Prueba de Nitritos 52

10. Prueba para d eterminar la concentración en la que se forman flóculos que interfieren en la deter minación colorimétrica de nitratos

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RESUMEN

La vida tal y como la conocemos en la Tierra, requiere por lo menos dos tipos de m acromoléculas: las proteínas y los ácidos nucleicos, que tienen en su estructura nitrógeno (N). Sin embargo, éste requiere ser fijado, ya que las principales especies químicas disponibles para que exista la v ida como la conocemos son especies del nitrógeno en formas específicas, entre ellas R-NH2, NH3, N2, N2O, NO NO 2

-, NO3-. Debido a que u na de la s

metas de la Astrobiología es la ev aluación de habitabilidad en el planeta Marte, y considerando modelos climáticos del Marte primitivo que sugieren que parte del nitrógeno atmosférico pudo haber sido convertido en material no volátil, es entonces por ello que los nitratos son de interés para determinar la potencial habitabilidad de sitios como lo es la s uperficie de Marte.

En esta tesis se propone una técnica colorim étrica capaz de cuantificar los NO3

- en suelos hiperáridos, como lo es el desierto de Atacama en el norte de Chile. Dicha técnica m ostró ser eficiente, pues es capaz de detectar indirectam ente nitratos en solución con lím ites de detección y cuantificación de 1.98×10-5±1.21×10-5 M y 6.62×10-5±1.17×10-

5 M, con un límite de confianza de 95%.

La técnica se probó en un transecto de hu medad norte-sur donde esperábamos obtener mayor cantidad de NO3

- en la zona norte qu e disminuiría hacia la z ona sur; por otro lado la muestra en la estación de Yungay, nos ayudó a entender com ovaria la concentración a profundidad. Los resultados indicaron que en la zona nor te existen eventos locales como los vientos, la hu medad, la altitud, entre otras que prom ueven un comportamiento donde la con centración de NO3

-, no si gue una tendenc ia clara. En la m uestra de la estación de Yungay, observamos que a mayor profundidad la concentración de nitratos aumenta significativamente.

Conocer la concentración de nitratos en el suelo de A tacama permitirá aplicar la técnica q ue utiliza la misión Curiosityen Marte por medio de un análisis termogravimétrico (TGA).

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1. ANTECEDENTES

1.1 El nitrógeno

El átomo del nitrógeno (N) posee cinco electrones de valencia y al igual

que el carbono (C) puede formar orbitales híbridos sp3. Asimismo, puede formar

hasta tres enlaces tipo sigma (σ), más un par de electrones no compartidos que da

lugar a u na geometría tetraédrica, deformada por la repulsión electrónica de los

electrones sobre los otros tres orbitales híbridos. Está capacidad es importante en

compuestos de carbono y nitrógeno ya que da lugar a la complejidad química de

los organismos. Los tres orbitales 2p contienen tres electrones de valencia (capa

semillena), lo cual hace que pueda aceptar los otros tres electrones de otro átomo

de nitrógeno, formando una molécula muy estable: el nitrógeno molecular (N2).

La gran estabilidad de esta molécula (N2), es que posee una de las energías de

disociación más altas, 941.69 kJ/mol en condiciones normales de presión y

temperatura, según el Instituto Nacional de Normas y Tecnología (NIST por sus

siglas en inglés). Debido a q ue se requiere una alta cantidad de energía para

disociar dicha molécula, la mayoría de los organismos vivos utilizan como

sustrato fuentes disponibles en las que el nitrógeno se encuentra reducido u

oxidado, entre ellos: los iones amonio (NH4+), nitrito (NO2

-), nitrato (NO3-) y

compuestos orgánicos nitrogenados, entre ellos las animas y las amidas. El

nitrógeno pasa a sus formas disponibles debido a procesos bióticos, y abióticos.

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Cabe mencionar que el mayor aporte en la Tierra lo generan los organismos con

un estimado de 2×1014gN/año1 (Canfield, 2010).

La vida tal y como la conocemos en la Tierra, requiere de por lo menos

dos tipos de macromoléculas, las proteínas y los ácidos nucleicos, que tienen en

su estructura nitrógeno. Las proteínas tienen una función estructural y

catalizadora, están conformadas por unidades llamadas aminoácidos. Mientras que

los ácidos nucleicos preservan y trasmiten la información que requieren los seres

vivos para realizar sus procesos metabólicos, y están constituidos por purinas y

pirimidinas. El nitrógeno, por lo tanto, es un elemento químico indispensable para

los seres vivos, que seguramente jugó un papel muy relevante en el origen de la

vida en nuestro planeta (Lehninger, 2009). Es importante mencionar que dicho

bioelemento se encuentra en su forma molecular como N2, y ha sido

probablemente muy abundante en la atmósfera terrestre desde que surgió la vida

en la Tierra. Debido a la gran estabilidad de la molécula es casi imposible que los

seres vivos lo incorporen para la formación de aminoácidos o bases nitrogenadas,

lo que hace necesario que la mayoría de los organismos requiera una fijación de

nitrógeno de manera adicional (Raymond, et.al., 2004).

1.2 Ciclo del nitrógeno en la Tierra

La fijación de nitrógeno es un proceso que convierte el N2 en moléculas

reactivas como ácido cianhídrico (HCN), amoniaco (NH3) u óxidos de nitrógeno

(NOX, como óxido nítrico [NO] y óxido nitroso [NO2]) los cuales son asimilados

1gN/año, dónde g=gramos, N=Nitrógeno.

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por los microorganismos, para posteriormente ser incorporados al resto de los

seres vivos (Carabias, 2009). La Figura 1, muestra el ciclo del nitrógeno que se

lleva a ca bo en la Tierra, el cual es considerado uno ciclos biogeoquímicos más

importantes, pues ayuda al equilibrio dinámico de la biosfera terrestre (Calixto

Flores, 2008).

Figura 1. Ciclo biótico y abiótico del nitrógeno. El nitrógeno (N2) atmosférico es fijado por los organismos para formar materia orgánica (MO) la cual puede ser transformada en amoniaco (NH3) y consumida por los organismos o pasar a los sedimentos. En caso de tomar la ruta biótica el NH3 es transformado en nitrato (NO3) y posteriormente desnitrificado; si es secuestrado en los sedimentos, durante el proceso de metamorfismo es oxidado hasta N2 y posteriormente liberado por vulcanismo e intemperismo (Adaptado de Pinti y Hashizume, 2011; Bebout et. al., 2013).

A continuación se describen las tres principales rutas de nitrógeno en la Tierra

(Carabias, 2009):

• Fijación industrial: Proceso fisicoquímico, que se basa en el principio de

Haber-Bosch, donde el nitrógeno junto con el hidrógeno reaccionan formando

NH3, similar a la fijación atmosférica. Este proceso es utilizado comúnmente para

la producción de fertilizantes.

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• Fijación atmosférica: Proceso fisicoquímico, donde la molécula de

nitrógeno es destruida por fuentes endógenas principalmente relámpagos,

vulcanismo y aerosoles marinos.

• Fijación biológica: En este proceso el nitrógeno es incorporado al suelo y

absorbido por algunos microorganismos antes de poder regresar nuevamente a la

atmósfera. Debido a la estabilidad química del gas atmosférico dinitrógeno (N2),

su reducción para formar NH3 requiere un gran aporte de energía.

La fijación biológica se realiza a t ravés de una enzima, la nitrogenasa,

generando principalmente un ion amonio (NH4+), dicha especie es fácilmente

utilizada por los seres vivos teniendo dos posibles destinos: 1) ser utilizado como

precursor para formar moléculas orgánicas, o 2) ser oxidado durante el proceso de

nitrificación (Thomazo, 2011). Si llega a incorporarse a las moléculas orgánicas,

el ciclo continúa, cuando al morir el organismo, la materia orgánica se

descompone liberando amonio en el proceso de amonificación, este NH4+ es

posteriormente reintegrado al suelo. Por otra parte, el amonio que entra al proceso

de nitrificación es procesado por dos grupos de procariontes: los que oxidan el ion

amonio y los que oxidan el nitrito; en ambos grupos de organismos se lleva a cabo

la siguiente reacción (ec. 1):

Los organismos que oxidan el ion amonio pasan de NH4+ a NO2

-; mientras

que, los oxidantes de nitrito llevan a ca bo únicamente la última parte de la

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reacción (Klotz, 2008). En la reacción anterior, una vez formados los nitratos

pueden ser incorporados por el fitoplancton en forma de materia orgánica,

mediante el proceso de asimilación para luego ser depositados en forma de

sedimento. Otra manera es que el nitrato sea reducido por los organismos

desnitrificantes a N 2 es mediante la siguiente reacción (ec. 2) (Pinti, et al, 2011;

Jones, 2008):

A largo plazo, la materia orgánica generada por los organismos vivos es

degradada por procesos diagenéticos, es decir, pasa a la forma NH4+, y libera una

gran parte del nitrógeno; sin embargo, la fracción restante es depositada en

sedimentos al sustituir al ion potasio (K+). Previamente, los procesos de

metamorfismo pueden reducir el nitrógeno fijado a N2 el cual es liberado a l a

atmósfera o secuestrado en inclusiones fluidas. El nitrógeno secuestrado en la

corteza es finalmente liberado a la atmósfera mediante vulcanismo (Busigny,

2013). Debido a l a coevolución tan estrecha que han tenido los ciclos del

nitrógeno biótico y abiótico en la Tierra (véase Figura 1), en términos globales el

ciclo se lleva a cabo mediante un único proceso altamente entrelazado, llamado

ciclo biogeoquímico.

Otra forma de transformación de los compuestos orgánicos nitrogenados

es por medio de la formación de aerosoles de sales marinas. Dichas partículas de

sal se forman por la acción combinada del viento y de las olas en el océano

(Pandis et. al., 1992; Jacobson et. al., 2000), la composición química depende de

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su fuente de origen: agua de mares y océanos. Los compuestos orgánicos

nitrogenados son oxidados a nitratos por la interacción de la atmósfera con la

radiación solar, alterando el índice de refracción global de la atmósfera que a su

vez determina la cantidad de luz que es dispersada y la que es absorbida.

Los nitratos (NO3-), son generados también como resultado de la

oxidación de precursores gaseosos de origen antropogénico (Seinfeld y Pandis,

1998). En la actualidad, se conocen numerosas fuentes emisoras de estos

precursores entre las cuales destacan la combustión del carbón y otros procesos de

combustión a t emperaturas elevadas (capaces de oxidar el N2 atmosférico), tales

como los que ocurren en las centrales térmicas (Vega, 2002). Los principales

gases emitidos por fuentes antropogénicas son así NO, NO2, cuya oxidación en la

atmósfera produce ácido nítrico (HNO3) (Warneck, 1988) como se muestra en la

siguiente reacción (ec. 3):

Los nitratos son altamente solubles en agua, y son rápidamente

consumidos por los microorganismos, por esta razón es poco común encontrar

depósitos de este compuesto (NO3-), sin embargo, se ha visto que en ambientes de

baja precipitación, pluvial, como en los desiertos, los nitratos pueden acumularse

tanto en la superficie como a poca profundidad.

Los microorganismos han regulado la composición atmosférica de la

Tierra desde el origen de la vida (Kasting, 2002). Las primeras formas de vida

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eran posiblemente heterótrofas, es decir, obtenían su fuente de energía por la

degradación de compuestos orgánicos existentes en el medio ambiente

(Lehninger, 2009). Sin embargo, al reducirse esta fuente de alimentación,

surgieron nuevas rutas metabólicas que permitieron a los organismos obtener

energía de otros medios. Actualmente, la atmósfera terrestre está compuesta

principalmente de los siguientes gases: nitrógeno (78%), oxígeno (21%) y argón

(1%), así como otros componentes, en la Tabla 1 se muestra la composición

atmosférica del aire seco actual.

Tabla 1. Composición atmosférica del aire seco.

Componente Fórmula química Volumen (%)

Nitrógeno N2 78.08

Oxigeno O2 20.95

Argón++ Ar 0.93

Dióxido de carbono CO2 0.033

Neón ++ Ne 0.0018

Helio++ He 0.0005

Kriptón++ Kr 0.0001

Xenón++ Xe 0.000009

Metano CH4 0.0002

Ozono O3 0.00005

++Gas inerte.

*Adaptada de Haynes, 2013.

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1.3 La importancia de los nitratos en la Tierra

Uno de los principales productos de la fijación de nitrógeno son los

nitratos (NO3-), los cuales son utilizados frecuentemente como fertilizantes,

proveyendo al suelo de nutrientes para las plantas. Los nitratos se caracterizan por

ser un anión poliatómico con una masa molecular de 62.0049g/mol. Dicho anión

es la base conjugada del acido nítrico, que consiste en un centro de nitrógeno,

rodeado por tres átomos de oxígeno unidos de forma idéntica en un arreglo de

plano trigonal (Enciclopedia de las ciencias 2013).

Todas las sales de nitrato inorgánico son muy solubles en medios

acuosos. Un ejemplo de una sal de nitrato inorgánico es el nitrato de potasio,

KNO3. Por otro lado, en química orgánica, un nitrato es un grupo funcional con la

fórmula química genérica RONO2, donde R representa cualquier residuo

orgánico. Estos compuestos son ésteres resultado de la reacción entre el ácido

nítrico y alcoholes formados por nitroxilación (ec. 4)

En todos estos casos, la descomposición térmica de los nitratos y su

consecuente liberación de gas genera grandes cantidades de energía química,

debido al alto contenido de energía del encale de nitrógeno molecular (N2). Sobre

todo en las reacciones de nitratos inorgánicos, la oxidación de los átomos de

oxígeno de nitrato es también un importante proceso de liberación de energía

(Lehninger, 2009).

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1.4 La importancia de los nitratos para la búsqueda de vida en

Marte

La Administración Nacional de Aeronáutica y Espacio (NASA, por sus

siglas en inglés) ha buscado evidencias de agua para detectar ambientes habitables

en nuestro sistema solar, bajo el enfoque de seguir el agua; además de utilizar

bioelementos como marcadores de ambientes en los que puede surgir o pudo

haber surgido la vida (Capone, 2006). Uno de los principales bioelementos para

caracterizar la vida tal como la conocemos en la Tierra es el nitrógeno y sobre

todo en su forma fijada, de nitratos (NO3-).

Algunos autores (Navarro-González, et. al. 2001 y Nna Mvondo et. al.,

2001), simularon el efecto que podría ocasionar descargas eléctricas en una

atmósfera compuesta de CO2 y N2, (similar a la que posee Marte en la actualidad)

para la formación óxidos de nitrógeno, y observaron que el principal producto

generado es el óxido nítrico (NO). Este modelo propone la formación de HNO

con una producción de entre 107 y 108 kg por año en la atmósfera marciana; el

cual en presencia de agua, podría disolverse y reaccionar consigo mismo

formando especies como diazenodiolato (HN2O2) y N-nitrosonitramida (HN3O3)

las cuales se descomponen rápidamente formando N2O, NO2- y NO3

-. Esto

permite que el óxido nitroso escape en forma gaseosa y sea fotolizado a N 2,

mientras los otros iones permanecen en solución. Mancinelli (1996) menciona que

la presencia de iones Fe2+ disueltos en presencia de NO2- y NO3

- causaría la

reducción de nitrito a am oniaco, el cual podría escapar a la atmósfera y ser

fotolizado a N2, o bien formar cationes amonio que podrían quedar secuestrados

en el regolito marciano sustituyendo al ion potasio (K+). La Figura 2 muestra el

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posible mecanismo de formación de nitrato en Marte; sin embargo, este modelo es

limitado pues requiere, la presencia de agua en la superficie de Marte en

cantidades suficientes para llevar a cabo dicha reacción.

Trabajos recientes arrojados por las misiones Curiosity y Oportunity

parecen favorecer esta idea, al menos durante el Noachiano temprano (Von-Paris,

2013; Grotzinger, 2014).

Figura 2. Posible mecanismo de formación de nitrato en Marte. La acción de fuentes de energía como relámpagos promueve la formación de NO en una atmósfera predominante de CO2 y N2, en estas condiciones el producto final de la reacción es HNO. En presencia de agua el HNO se disuelve y dimeriza formando N2O2 y N3O3 los cuales se descomponen en NO2

- y NO3-. Finalmente en una disolución con Fe2

+, el NO2-

se descompone a NH3 (Modificado de Mancinelli 2013).

Por otro lado, Smith (2014), propuso la formación de nitrato y pernitrato

(HNO4) por reacciones fotoquímicas en ausencia de agua. Dicho modelo se aplicó

a condiciones similares a las del Amazoniano, una de las eras geológicas antiguas

del planeta Marte (Tabla 2) y han sido extrapolables a la actualidad.

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Noachiano temprano Noachiano medio-tardío Hesperiano Amazoniano

Un campo magnético protege la atmósfera.

Formación del altiplano Tharsis.

Alta velocidad de erosión.

Escape hidrodinámico de la atmósfera.

Formación de los sistemas de valles.

Eyección atmosférica por impactos

Formación de las planicies principales por

impactos.

Sustratos de volátiles por los impactos Canales de flujo catastrófico

4.6 4.0 3.7 1.0 0

Tiempo (Gyr antes del presente)

Tabla 2. Eras geológicas de Marte. Se muestran las eras geológicas de Marte, así como los principales eventos que ocurrieron en cada una de ellas. Modificado de Jakosky et. al., 2001.

Actualmente sabemos que el suelo marciano es altamente oxidante, por lo

que podría favorecer el depósito de las siguientes especies químicas NO3- o HNO4

en el regolito2, por ser las más estables en estas condiciones. Una prueba indirecta

de este mecanismo es la presencia de nitratos 8NO3-) en una inclusión de sales en

el meteorito marciano EETA79991, con una edad estimada 170 ± 2 millones de

años (Kounaves, 2014). Esto podría indicar que los NO3- se formaron entre 1-2

mil millones de años sobre la superficie marciana.

2 El término regolito se refiere a una capa superficial formada por la destrucción de rocas, en la cual no hay actividad biológica implicada en su formación.

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1.5 Desiertos

Aproximadamente un tercio de la superficie de la Tierra está constituida

por suelos desérticos; estos pueden ser clasificados de acuerdo a la cantidad de

precipitación que reciben anualmente, la temperatura, humedad u otros factores,

como el potencial de evapotranspiración3, (Enciclopedia de las ciencias, 1987). En

la Tabla 3 se muestran los principales desiertos del mundo.

Tabla 3. Principales desiertos del mundo por continente.

Área geográfica Desiertos

América Atacama, Mojave, Gran Cuenca, Sonora, Chihuahua.

África Libia, Kalahari, Sahara, Namibia.

Asia-Pacífico Gobi, Kara-Kum, Thar-cholistan, Kyzyl-kum, Kazagistan, Negev, Uzbequistan, Tanami, Victoria, Stur, Sandy, Tengger, XinkiangUighur, Taklamakan.

Tomada y adaptada de Enciclopedia de las Ciencias, 1987

Los desiertos están compuestos por suelos denominados aridisoles, que se

caracterizan por sus colores claros, son pobres en material orgánico, presentan

reacción alcalina y constituyen una capa delgada, de apenas unos cuantos

centímetros. En geografía física se designa desierto a una región con poca

precipitación, comúnmente formados por arena, terrenos rocosos, formación de

dunas, depósitos de minerales así como escasa vegetación, donde más del 50% de

la superficie son llanuras (Enciclopedia de las Ciencias, 1987).

3 Pérdida de agua por evaporación atmosférica.

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Los desiertos, también pueden ser clasificados, por su situación geográfica

como la altitud, latitud, si son polares o costeros; por los fenómenos físicos que

hacen que predomine un clima árido como los vientos alisios, el efecto de sombra

de lluvia orográfica4 y el monzón. Aquellas zonas que en la antigüedad fueron

desiertos y que actualmente no lo son se denominan paleodesiertos; y por último,

los desiertos extraterrestres que existen en otros planetas como lo es Marte,

dominado por fuertes vientos formadores de dunas y grandes depósitos de arena

(Enciclopedia de las ciencias, 1987).

En la Tierra, la mayoría de los desiertos se encuentran en la zona de los

vientos alisios5, en los trópicos muy cerca del Ecuador como se muestra en la

Figura 3:

4 El efecto de sombra de lluvia orográfica se da debido a que en ocasiones se encuentran cadenas de montañas que corren más o menos paralelas a las costas. En estos casos, el aire húmedo y cálido que circula del mar hacia el continente choca contra las montañas, permitiendo que se eleve y se enfrié para descargar toda la humedad en forma de lluvia. Mientras que el aire que pasa del otro lado de la montaña es completamente seco. 5 Los vientos alisios son vientos secos que disipan las capas de nubes, haciendo que esas zonas reciban una mayor radiación solar.

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Figura 3. Distribución de los vientos alrededor de la Tierra: Se muestra las zonas de alta y baja presión. En la zona donde se localizan los vientos alisios predominan el clima desértico (Tomado de Enciclopedia de las Ciencias, 1987).

Otro criterio utilizado para definir un ambiente árido es el índice climático

de aridez, definido por la FAO y la UNESCO en 1977; por último Meigs Peveril

en 1953, propuso una metodología para clasificar a los desiertos con respecto a la

cantidad de precipitación pluvial anual, agrupándolos en tres categorías.

a) Zonas semiáridas: Son lugares que suelen estar situadas en los bordes de

los desiertos y abarcan alrededor del 15% de la superficie del planeta; se les suele

conocer como estepas (llanura sin árboles, cubierta de pastizales); tienen una

media de precipitaciones de 200 a 500 mm anuales.

b) Zonas áridas: Estas zonas abarcan el 16% de la superficie de la Tierra y

tienen precipitaciones anuales de 25 a 200 mm.

c) Zonas hiperáridas: Son aquellos lugares cuyo índice de aridez es menor a

0.05 mm de precipitación pluvial, corresponde a los desiertos extremadamente

secos, donde a veces no llueve durante años; estos abarcan el 4% de la superficie

terrestre.

Las características climáticas que presenta el planeta Marte en la

actualidad, corresponden a un clima desértico, con un bajo contenido de material

orgánico. Dichas características fueron determinadas por la misión espacial

Vikingo, por lo tanto, la búsqueda de ambientes análogos al planeta rojo se reduce

a la búsqueda de zonas desérticas y, en el mejor de los casos, zonas hiperáridas en

la Tierra.

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1.5.1 Suelos análogos a Marte

Un análogo marciano es un sitio en la Tierra cuyas condiciones

ambientales, características geológicas, atributos biológicos o una combinación de

éstas, se aproxima en alguna forma a aquellas esperadas u observadas en Marte

(Marlow, 2008). Los Valles Secos de la Antártica han sido los primeros análogos

(Uydess, y Vishniac, 1976). Debido al alto costo de una misión espacial, los

científicos muestran preocupación en sus preparativos, por los que los análogos en

la Tierra son de gran importancia en la exploración de planetas como Marte, pues

estos ofrecen una oportunidad relativamente segura y barata para hacer las

pruebas necesarias (técnicas, mecánicas y científicas) anteriores a una misión

(Marlow, et. al., 2008; Vargas-Frías, 2012). Estos materiales son similares a los

suelos marcianos, pues deben reunir características tales como provenir de un

ambiente árido, clima frío, abundantes cantidades de basalto así como la presencia

de depósitos sedimentarios eólicos y fluviales (Dinwiddie et al., 2004). Sin

embargo, no todos los análogos actuales son apropiados para todas la pruebas

necesarias (Marlow, 2008).

Los análogos marcianos están enfocados al cumplimiento de uno o varios

de los siguientes objetivos: a) detectar vida y/o sus vestigios, b) determinar el

clima presente, pasado y en proceso, c) determinar los procesos geológicos que

han creado y modificado al planeta Marte y d) preparar la exploración humana

(Farr, 2004; Marlow, 2008).

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De acuerdo con Marlow en 2008 los análogos marcianos se pueden

clasificar de acuerdo a las propiedades marcianas que mejor reproducen en:

• Análogos químicos. Son suelos terrestres que presentan gran similitud al

regolito marciano en términos de sus propiedades químicas como lo son: la

constante dieléctrica, potencial redox, pH, composición elemental y composición

mineralógica. Esta clase de análogos es utilizada para probar y calibrar, los

instrumentos científicos, así como los procedimientos para interpretar las

condiciones de formación del suelo marciano (Navarro- González et al., 2003,

Cabane et al., 2004, Mattingly et al., 2004 y Bada et al., 2007).

• Análogos mecánicos. Estos suelos poseen propiedades mecánicas

similares a la del suelo marciano tales como: fuerza de cohesión, ángulo interno

de fricción, entre otras. Estos materiales son útiles para el desarrollo de robots y

sistemas de amartizaje.

• Análogos físicos. Se buscan suelos que posean materiales con propiedades

físicas similares (tamaño, distribución de partículas, forma de las mismas,

densidad, porosidad, contenido de agua y propiedades termofísicas como el

albedo y la inercia física). El uso en laboratorio de esos materiales podría

clarificar el pasado y el presente de las interacciones entre el agua-suelo.

• Análogos magnéticos. Estos suelos presentan propiedades magnéticas

marcianas como la susceptibilidad y saturación magnética. Son utilizados para

probar los instrumentos que tienen relación con el magnetismo y/o pueden ser

afectados por éste.

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• Análogos orgánicos. Estos son suelos casi estériles y son especialmente

útiles en la simulación de suelos con bajo contenido de materia orgánica. Esto se

debe a que la búsqueda de vida, ya sea pasada y/o presente, de Marte es uno de los

objetivos más importantes en la exploración del planeta. Muchos de los

instrumentos en desarrollo para la detección de vida en las próximas misiones

emplean este tipo de suelos para probar los instrumentos que detectan trazas de

moléculas de interés biológico, permitiendo a los científicos e ingenieros evaluar

la sensibilidad del instrumento, así como la funcionalidad en campo (Navarro-

González et al., 2003, Cabane et al., 2004, Mattingly et al., 2004 y Bada et al.,

2007)

Los suelos pueden clasificarse en más de uno de estos tipos como lo

muestra la Tabla 4 y son utilizados principalmente en función a las propiedades

del regolito que se quiere estudiar.

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Tabla 4.Principales suelos análogos a Marte. (Adaptado de Marlow, 2008)

Mar

s-1

Satt

en S

kon

Ata

cam

a

Moj

ave

Are

quip

a

Rio

Tin

to

Propiedades químicas Potencial redox x x pH x x x x Conductividad eléctrica x Volátiles x x Composición mineralógica x x x x x x

Propiedades mecánicas Fuerza de cohesión x Ángulos de fricción interna x

Propiedades físicas Tamaño de la partícula x x Forma de la partícula x Densidad x Densidad en bulto x x Porosidad x Contenido de agua x x

Propiedades magnéticas Saturación magnética x

Contenido orgánico Contenido total de carbono x x Abundancias moleculares x x x x Bacterias cultivables x x x x

Propiedades químicas, mecánicas, físicas, magnéticas y orgánicas de los principales suelos análogos marcianos.

1.6 Astrobiología

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La astrobiología es una disciplina que estudia el origen, evolución y futuro

de la vida en el Universo, por lo que trata de entender su naturaleza en la Tierra y

la posibilidad de encontrarla en otro lugar del Universo (Morrison, 2001).

En estados Unidos se encuentra el instituto de Astrobiología más

importante a nivel mundial, el NAI, por sus siglas en inglés, es respaldado por la

NASA. En 2008, el NAI publicó una guía llamada “Astrobiology Roadmap”, en

la que se plantearon siete metas que guían los estudios en Atrobiología. A

continuación se describen brevemente.

• Meta 1. Comprender la naturaleza y distribución de ambientes habitables

en el Universo.

• Meta 2. Determinar ambientes habitables en el tiempo presente, pasado y

futuro del Sistema Solar, al igual que la química prebiótica y los signos de vida en

otros lugares.

• Meta 3. Entender cómo surgió la vida en la Tierra a partir de percusores

cósmicos planetarios.

• Meta 4: Comprender cómo ha co evolucionado la vida en la Tierra a

través del tiempo geológico.

• Meta 5. Estudiar los mecanismos evolutivos y límites ambientales para la

vida.

• Meta 6. Aprender sobre el futuro en la Tierra y otros cuerpos.

• Meta 7. Identificar señales potenciales de vida en la Tierra primitiva y en

otros mundos.

Cabe mencionar que la Astrobiología es una rama, multidisciplinaria de la

ciencia pues en ella se involucran la física, la astronomía, la química, la geología,

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la ingeniería, la biología, entre otras. Con el apoyo de cada una de estas áreas

científicas se han desarrollado programas espaciales enfocados a la búsqueda de

vida fuera de la Tierra, para obtener información fidedigna, que serán

interpretadas, probadas y en ocasiones modificadas por expertos en el trascurso de

la investigación.

Los requerimientos de la vida en la Tierra son: presencia de agua líquida,

fuentes de energía y bioelementos; por lo que, la búsqueda de éstos en otros

mundos, representa el reto si se pretende encontrar vida en lugares más allá de la

Tierra (Vargas-Frías, 2012). Este objetivo queda incluido en la segunda meta,

donde se indica que se deben establecer signos factibles de vida en ambientes

habitables del pasado, presente y futuro del sistema solar, así como la química

prebiótica. Por lo tanto, que un ambiente que contenga agua líquida, bioelementos

(carbono, nitrógeno, hidrógeno, etc.) y fuentes de energía (exógena y endógena),

lo hace un ambiente que se denomina habitable. Para ello se trata de explorar las

superficies y atmósferas planetarias; particularmente la de Marte.

1.6.1 Misiones espaciales en Marte

La exploración espacial de Marte comenzó en el contexto de la carrera

espacial entre Estados Unidos y la extinta Unión Soviética. La percepción de

Marte como un planeta habitable comenzó con el lanzamiento de la misión

Marsnik 1 e n 1960, a la que han seguido cerca de cincuenta misiones más

lanzadas tanto por Estados Unidos y la extinta Unión Soviética; una de las más

memorables fue la sonda espacial Mariner 4 ( 1965), la cual concluyó que no

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existían canales de irrigación en la superficie de Marte como se especulaba, que

tan sólo se trataba de un efecto de difracción en la óptica de ciertos telescopios

(Ezell.y Neuman, 1984).

Del mismo modo, la misión estadounidense Mariner 9 (1971), a cargo de

la NASA, contribuyó de manera exitosa al ser la primera en orbitar otro planeta,

de esta forma pudo enviar una gran cantidad de información sobre el planeta rojo,

ya que realizó un reconocimiento orbital durante un año, obteniendo un mapeo

global de la superficie del planeta y sus satélites. Otras importantes misiones

fueron las “Viking”, que operaron desde 1975 hasta 1982, con las cuales se dió

inicio a la era moderna de la exploración espacial, y los nuevos retos para la

búsqueda de vida en Marte.

En 1968 nace la misión “Viking” con el objetivo de evidenciar la

existencia de formas de vida en el planeta Marte. La iniciativa la tomó un pequeño

grupo de biólogos, denominados en aquel tiempo como “exobiólogos” (Levinthal

et al., 1977). La misión constaba de dos orbitadores y dos módulos de descenso;

los cuales contenían la instrumentación necesaria para obtener imágenes de la

superficie, caracterizar la estructura y composición atmosférica; además fue la

única misión que hasta ese momento llevaba consigo experimentos biológicos

para determinar la existencia de vida y un equipo químico para caracterizar los

componentes orgánicos en el suelo marciano. Los resultados mostraron evidencia

de actividad volcánica antigua, arcillas enriquecidas en hierro, tormentas de polvo

y cambios de presión estacionales. Debido a q ue los experimentos biológicos

detectaron vida, pero el experimento químico no lo hizo, los resultados obtenidos

resultaron controversiales. Sin embargo, los resultados de las sondas Viking,

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permitieron encaminar las nuevas misiones que serían enviadas al planeta Marte,

generando nuevas estrategias (Biemann et al., 1977).

Para comprender mejor los resultados obtenidos por las misiones Viking,

se programó la misión Phoenix. Sus principales objetivos fueron estudiar la

historia geológica del agua y evaluar la potencial habitabilidad planetaria en el

límite del suelo-hielo. Los análisis de suelos marcianos indicaron la presencia de

carbonatos, así como de percloratos (Hecht et. al., 2009); lo cual tiene importantes

implicaciones en la detección del material orgánico para futuras misiones que se

envíen a Marte, ya que los percloratos oxidan el material orgánico, impidiendo su

detección por los instrumentos analíticos, lo cual abre la posibilidad de reevaluar

los resultados obtenidos por las técnicas de extracción y análisis de volátiles

ocupadas por las misiones vikingo (Navarro‐González et. al., 2010).

1.6.1.1 Misión Curiosity

La evidencia de agua en Marte, demostró que la estrategia para seguir al

agua ha sido eficiente y permitió el avance hacia un nuevo objetivo: evaluar los

procesos biológicos, geológicos, geoquímicos y planetarios; es así como surge una

misión de largo alcance, Mars Science Laboratory (conocido como “Curiosity”),

cuyo objetivo principal es investigar las condiciones climáticas y ambientales que

pudieran haber sido favorables para la vida microbiana y/o la preservación de

pistas en rocas de posible vida en el pasado (Navarro‐González et. al., 2010). La

misión Mars Science Laboratory (MSL), es un programa que consiste en un rover

(o modulo móvil) denominado Curiosity que fue construido para tener una vida

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útil de 23 meses terrestres (un año marciano). El vehículo cuenta con seis ruedas

independientes, y puede desplazarse por la superficie marciana entre 100 y 200 m

cada Sol; a diferencia de otros rovers tiene un generador termoeléctrico de

radioisótopos en lugar de paneles solares. Esta misión cuenta con comunicación

directa a l a Tierra mediante los orbitadores Odyssey, Mars Reconnainssance

Orbiter, Mars Express y MAVEN.

El MSL aterrizó el 6 de agosto de 2012 en el cráter Gale (4.49°S,

137.42°E). Este sitio fue seleccionado por ser un lugar con facilidades para el

aterrizaje ya que cuenta con una baja altitud, -4.4 km (determinado por Altimetría

Laser por Satélite en Marte, MOLA) lo que permitió un frenado eficiente durante

la entrada de la sonda a at mósfera y su adecuado posicionamiento. En la parte

central del cráter se encuentra un monte estratificado denominado Aeolis Mons,

en cuya base se han detectado minerales hidratados como sulfatos, hematitas y

arcillas, es decir minerales que se forman en presencia de agua (Grotzinger, 2014).

A diferencia de la misión Viking, MSL no tiene la capacidad de detectar vida de

manera directa, pero si puede identificar moléculas orgánicas complejas, así como

posibles bioseñales en el regolito y en la atmósfera (Grotzinger, 2014).

Para cumplir con los objetivos de la misión el Curiosity ésta lleva consigo

diez instrumentos científicos; entre ellos un analizador de muestras de Marte

(SAM) que consiste en un cromatógrafo de gases (GC), un espectrómetro de

masas cuadrupolar (QMS) y un espectrómetro de absorción láser con diodo

(TLS). Con la finalidad de obtener datos más precisos el instrumento posee la

capacidad de realizar calentamientos de baja temperatura en uno de sus siete

recipientes con una mezcla de los agentes derivatizantes MTBSTF (N-terc-

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butildimetilsili-N-metiltrifluoroacetamida [C9H18F3NOSi]) y DMF

(dimetilformamida [(CH3)2NC(O)H]). El principal objetivo de estos instrumentos

es detectar moléculas orgánicas e inorgánicas, así como marcadores isotópicos

que pudieran ser relevantes para la vida (Mahaffy, et al., 2013). De los resultados

obtenidos por SAM hasta el momento se ha detectado la liberación del ion 30,

comúnmente asociado al ion NO3- , esta especie se detectó en concentraciones de

12 a 70 nmol, por encima del nivel basal de esta especie que pudiera ser debida a

MTBSTFS y DMF (Ming, 2014).

1.6.2 El desierto de Atacama como análogo de Marte

En las zonas de extrema aridez, los nitratos son formados por reacciones

fotoquímicas de nitrógeno y oxígeno, que no son consumidas por la vida ni

transportadas por el agua, generando un lento deposito de dichos compuestos, y

encontrándolos en alta concentración sobre la superficie. Se ha calculado que los

depósitos de sales en el desierto de Atacama se formaron en un período de 107

años, mientras que para la región del Valle de Muerte en el desierto de Mojave en

California se calcula un periodo de 104 años (Bhölke, et. al., 1997). Estos

resultados contrastan con zonas donde existe una mayor humedad, donde los

depósitos de estas sales se deben a la actividad biológica.

El desierto de Atacama, es considerado uno de los más secos del planeta.

Se ubica a lo largo de la Costa Pacífica de América del Sur, abarcando el sur de

Perú y el norte de Chile, con una extensión de 132 000 ki lómetros cuadrados

(Figura 5). Actualmente, presenta una precipitación anual de unos cuantos

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milímetros; tiene los más grandes depósitos de NO3- en nuestro planeta

(Michalsky, 2004). Es considerado un desierto templado, pues su temperatura

promedio es de 15°C manteniéndose estable a lo largo del año, y puede presentar

variaciones no mayores a los 2°C (McKay et. al., 2003). Este desierto se

encuentra clasificado como Ea23 dentro del índice de aridez de Meigs6. El

desierto de Atacama es considerado como un análogo orgánico de Marte debido a

la baja concentración de materia orgánica presente en el suelo; además de poder

asemejar el regolito marciano en potencial redox, pH, conductividad eléctrica

composición mineralógica y contenido de agua (Marlow, 2008). La extrema

aridez, así como la casi ausencia de seres vivos presentes en la región más árida

de Atacama, ha permitido el depósito de cantidades considerables de nitratos, esto

nos permitirá utilizar técnicas de detección de nitratos enfocadas al estudio de los

mismos en Marte, para entender los resultados de futuras misiones.

Figura 4. Mapa de Sudamérica, en azul se marca la zona de estudio (20° y 30°S), a la derecha vemos una imagen donde apreciamos como se ve parte del desierto de Atacama.

6 Ea23 donde: E= extremadamente árido, a= no existe una marca temporal de precipitación, 2=Indica temperaturas promedio en los meses más fríos que oscilan entre los 10°C y 20°C, y 3= Indica las temperaturas promedio en los meses cálidos las cuales oscilan entre los 20°C y 30°C.

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Debido a s u extrema aridez, presenta un bajo nivel de erosión, acumula

sales poco comunes en el suelo como: percloratos (ClO4-), yodatos (IO3

-) y

nitratos (NO3-),de las cuales se ha establecido mediante estudios isotópicos tiene

un origen mayoritariamente atmosférico (Ericksen, 1981). Estudios anteriores

sugieren que la desertificación se inició hace aproximadamente 14 millones de

años, permitiendo que la hiperaridez del desierto comenzara a finales del

Plioceno. La parte más árida se localiza entre los 22° a 26° S y los 70° W, donde

se forma un amplio valle entre las montañas costeras del Pacífico (Cordillera de la

costa) y la cordillera media (Cordillera de Domeyko). La anchura media del

desierto es de 145 k m y su elevación promedio es de 609 msnm, además el río

Loa lo limita al Norte y el río Copiapó al Sur (Börges 1973).

Los factores que han contribuido a la formación del desierto son: 1) el

efecto de sombra de lluvia orográfica generada por la Cordillera de los Andes al

Este y la Cordillera de la Costa al oeste, y (2) la corriente fría de Humboldt7en el

noroeste (Michalski, 2004). El desierto de Atacama muestra un gradiente de

precipitación norte-sur causado por las incursiones del viento polar, debido a que

a una latitud sur de ~45° el espesor de la corteza se ve disminuido hasta 35 km de

altura, permitiendo que los vientos del oeste entren al contiene cambiando las

condiciones del clima, trayendo consigo abundante humedad; a esa misma latitud

pero en el Este la corriente fría de Humboldt se invierte debido al efecto de baja

presión denominado corriente de Ferrel, la cual lleva corrientes húmedas al

continente generando precipitaciones moderadas (Ernst, 2004).

7 Corriente fría de Humboldt: Es una corriente oceánica originada por el ascenso de aguas profundas y, por lo tanto, muy frías, que se produce en las costas occidentales de América del Sur.

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1.6.3 Razones para estudiar el nitrato en Marte

El factor más importante en la acumulación de NO3- en Atacama ha sido el

tiempo, pues aproximadamente desde el Terciario Medio ha sido desierto. Esto se

refleja en los grandes depósitos explotables de nitratos. En algunos otros desiertos

del mundo, los suelos ricos en NO3- se producen a nivel local, y pudieron

formarse durante los lapsos de aridez extrema, pero habrían tendido a s er

destruidos durante los intervalos de aumento de las lluvias (Ericksen, 1981).

Algunas estimaciones climáticas sugieren que algunos eventos de lluvia

ocurrieron hace 10-16 mil años, pero desde ese entonces la lluvia no ha penetrado

el Corazón Atacama (Betancourt et. al., 2000). Por otro lado, estudios

paleoclimáticos, indican que no ha habido eventos de lluvia d esde hace unos

325000 años en el salar de Atacama, es por ello que conserva registros

sedimentarios del Cenozoico y Mesozoico (Bobst et. al., 2001; Constantino et. al.,

2005).

McKay y colaboradores realizaron un estudio meteorológico entre 1994-

1998 en la zona más árida del desierto de Atacama, demostraron que en cuatro

años de estudio sólo una noche ocurrió un episodio de lluvia de 2.3 mm, el cual se

cree se debió a la condensación de la fuerte neblina o cachamaca. Incluso, el

fenómeno de “El niño” no ha logrado modificar las condiciones climáticas

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(McKay et. al., 2003). La evidencia geológica y mineralógica sugiere que la zona

más árida del desierto ha permanecido así por más de ~10-15 millones de años

(Ericksen, 1983), convirtiéndose en el desierto más antiguo del mundo.

El origen de los nitratos y sales depositados en el desierto de Atacama ha

sido debatido desde que Charles Darwin, durante su visita, al desierto sugirió que

estos se formaron en el margen interior del brazo del mar (Ericksen,1981).

Posteriormente, se propuso un depósito atmosférico proveniente de las sales del

mar por medio de aerosoles y episodios volcánicos (Böhlke et. al., 1997).

Actualmente se han estudiado tres isótopos de oxígeno (16O, 17O, y 18O) en los

nitratos y sulfatos que se han depositado en el desierto para determinar su

procedencia. En los resultados obtenidos se encontró una marcada diferencia en la

proporción de isótopos involucrados en procesos biológicos y los contenidos en la

atmósfera. De esta manera, la mayoría de los nitratos y otras sales depositadas en

el desierto de Atacama parecen conservar la fracción de isótopos contenidos en la

atmósfera (Michalsky et. al., 2004).

Por lo tanto, la alta concentración de nitratos se debe a un lento depósito

de compuestos generados por reacciones fotoquímicas de nitrógeno y oxígeno,

que no son consumidas por la vida ni transportadas por el agua, debido a la

extrema aridez del desierto. Estos resultados contrastan con zonas donde existe

una mayor humedad, donde los depósitos de estas sales se deben a la actividad

biológica.

Este trabajo es la continuación de un proyecto en conjunto realizado en el

Laboratorio de química de plasmas y estudios planetarios del Instituto de Ciencias

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Nucleares de la UNAM, en el cual se valido la técnica colorimétrica

implementada para este trabajo.

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2. OBJETIVOS

2.1 Generales

Evaluar el contenido de nitratos en suelos superficiales (0-10 cm) del

desierto de Atacama, como posible análogo de Marte, a lo largo de un gradiente

de humedad norte-sur y a profundidad, la finalidad es identificar la zona de mayor

hiperaridez utilizando una técnica colorimétrica capaz de identificar

indirectamente la presencia de nitratos.

2.2 Particulares

Para cumplir el objetivo principal se propuso:

a) Identificar posibles interferencias en la determinación de nitratos en suelos

hiperáridos, análogos a Marte como lo es el desierto de Atacama en el norte de

Chile, al utilizar una técnica colorimétrica.

b) Determinar si la concentración de nitratos tiene alguna relación con

variables tales como la topografía, humedad, entre otras.

c) Determinar la concentración de NO3- en muestras de suelos tomadas de la

zona más árida (Yungay) en una sola localidad a seis diferentes profundidades.

d) Determinar, mediante la técnica de detección de nitratos la concentración de

dicha especie en un transecto norte-sur del desierto de Atacama.

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3. HIPÓTESIS

La zona norte del desierto de Atacama es la más árida, por lo que se

espera que las concentraciones de nitrato en e l suelo se increm enten hacia

esta zona en el gradiente de humedad norte-sur. Por otro lado, en la estación

de Yungay, que es la zona más árida espera mos que las concentraciones

serán mayores al incrementarse la profundidad.

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4. METODOLOGÍA

4.1 Colecta de muestras

Las muestras de suelos del desierto de Atacama fueron colectadas en el

año 2001, a lo largo de un gradiente de humedad Norte-Sur. Se colectaron entre 0

y 10 c m de profundidad en un radio de 5 m2, para tener una mayor

representatividad de la zona de muestreo. Las muestras fueron colectadas con

pequeñas palas de polietileno estériles y almacenadas en bolsas herméticas y

estériles del mismo material. Estas muestras que contenían aproximadamente 500

g de suelo cada una, fueron trasportadas lo más pronto posible a la Cd. de México,

donde se almacenaron en un lugar seco para su posterior análisis. La zona de

muestreo es aproximadamente a 70° de latitud norte y de 23-29° de latitud sur. La

ubicación de las muestras colectadas se indica en la tabla 5 y las figuras 5 y 6 a, b.

Tabla 5. Ubicación de muestras

Muestra Latitud Longitud Altitud (m)

M22 -24.069 -69.850 1100 AT02-31 -24.216 -69.916 1232 AT02-30 -24.401 -69.929 1353 AT02-29 -24.574 -69.796 1637 AT02-28 -24.734 -69.793 1899 M23 -24.999 -69.855 2149 AT02-27 -25.095 -69.884 2016 AT02-16 -25.305 -69.842 1950 AT02-17 -25.797 -69.844 1794 AT02-19 -26.353 -69.865 1139 AT02-22 -28.118 -69.917 1485 AT02-23 -27.022 -70.295 1184

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Figura 5. Mapa digital del desierto de Atacama en el norte de Chile. Se señala la zona minera de explotación de NO3

- delimitada por una línea negra, asimismo los sitios muestreados en el área de Yungay en rojo. Es importante mencionar que este mapa muestra zonas que no fueron analizadas en esta tesis. Tomado de Navarro-González, et. al., 2003.

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Figura 6. Ubicación de las muestras. Mapa de la región del desierto de Atacama donde se indica la ubicación de las muestras con su clave: M22 y 23, AT02-16 a 17, 19-23 y 27 a 31. Así mismo muestra la precipitación pluvial (mm) de las regiones de Antofagasta (3mm), Taltal (13 mm), Chañaral (13 mm) y Copiapo (18.5 mm). En la figura 6a) se muestra la zona norte del desierto donde encontramos las minas de nitratos y en la figura 6b) observamos la zona sur del desierto de Atacama donde la precipitación se ve aumentada.

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encontramos las minas de nitratos y en la figura b) observamos la zona sur del desierto de Atacama donde la precipitación aumenta.

4.2 Colorimetría

La colorimetría es un tipo de técnica espectroscópica en la región del

visible. Este tipo de técnicas se basa en la cuantificación de la concentración de

una especie química mediante la absorción a longitudes de onda específica. Dicho

fenómeno sigue la ley de Lambert-Beer (ec. 5), la cual nos indica que la

absorbancia es directamente proporcional a la concentración de una especie

química (c), así como a la distancia que recorre el haz de luz (b) y una constante

denominada absortividad molar (a) (Skoog, 2001).

Con esta técnica también es posible medir la transmitancia (T), que es la

fracción de la luz incidente que atraviesa la muestra; sin embargo, debido a que

este parámetro tiene un comportamiento logarítmico, es preferible utilizar la

absorbancia que es lineal. Para obtener la relación entre la transmitancia y

absorbancia utilizamos la siguiente fórmula:

4.3 Preparación de las muestras

La técnica colorimétrica consististe principalmente en tres pasos 1)

extracción de sales solubles, 2) reducción de nitrito a nitrato y 3) la formación de

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una sal de azonio8. Este trabajo aplicará una técnica capaz de cuantificar nitratos a

nitritos.

4.3.1 Extracción de sales solubles

La extracción de nitratos en cada una de las muestras de suelo

provenientes del desierto de Atacama se realizó utilizando la técnica establecida

por Mulvaney et. al. 1996. Esta técnica consiste en introducir 1 g de suelo a un

tubo de centrífuga de 15 mL y adicionar 10 mL de una solución 2 M de cloruro de

potasio (Meyer, Cat. 2015-500). Inmediatamente después los tubos se agitaron en

un vórtex miltipuso (Glas-Col, Cat. 099A VB4) a 40 vi braciones por segundo

durante una hora. La mezcla se dejó reposar hasta que la disolución se aclarara, y

luego se centrifugó por dos minutos a 4400 r pm en una centrífuga (Epperdorf

5702). Con cuidado se extrajo el sobrenadante, el cual se filtró en un embudo

cerámico tipo Büchner con papel filtro Whatman No. 41. Dicho dispositivo fue

montado sobre un matraz kitasato de 1 L, conectado al sistema de vacío del

laboratorio, el filtrado fue recolectado en un tubo de centrífuga colocado dentro

del matraz, véase la Figura 7 que muestra el dispositivo utilizado.

8 Las sales de azonio son compuestos orgánicos de la forma de R-N=N-R.

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Figura 7. Aparato de filtración. A) Embudo Büchner, B) matraz Kitasato, C) tubo de centrífuga, D) base para el tubo y E) salida de vacío.

4.3.2 Reducción de nitrato a nitrito

Una vez que se extraen los nitratos (NO3-) estos son reducidos a nitritos

(NO2-) por medio de zinc metálico y cloruro de sodio (NaCl)9 donde el segundo

es utilizado como vehículo para la reacción se utiliza. En el trabajo realizado por

Martínez-Sosa en 2015, la cantidad óptima de zinc que se añade al sobrenadante

obtenido de la extracción es 0.005 g, para analizar 1 g de suelo, en un medio ácido

HCl (0.5 mL al 36%). Este es el paso más importante en la determinación de los

nitratos, dado que bajo estas condiciones la reacción de reducción es más

eficiente. Las ecuaciones 7 y 8 muestran las reacciones de oxidación y reducción

que se llevan a cabo.

………7

…. 8 9 La técnica original fue tomada de Spectrophotometric Metod for the Determination of Nitrate and Nitrite, 2009.

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4.3.3 Formación de la sal de diazonio

Los nitritos contenidos en el sobrenadante se mezclan con 2 mL de una

solución al 2% de sulfanilamida (SA, Aldrich Cat.63-74-1) en medio ácido (ácido

fosfórico al 6%), y se agita por 5 minutos en un vórtex para formar una sal de

diazonio, a la cual posteriormente se le agrega 2 mL de una solución 0.14% de N-

1-naftiletilen-diamina (NEDA, Aldrich Cat.1465-25-4) para formar un compuesto

azoico de color violeta, cuyo máximo de absorción se encuentra a 5 40 nm. Por

último, la solución obtenida s e lleva a u n volumen total de 10 mL con agua

destilada; está solución se trasvasa a u na celda de vidrio y es analizada en un

fotómetro (LaMotte, DC-1600). La Figura 8 muestra las reacciones necesarias

para formar un compuesto colorido tipo AZO.

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Figura 8. Reacciones para la formación de un compuesto azo. Podemos ver a) la reacción entre nitrito y Sulfanilamida para formar la sal de diazonio. En b) observamos la reacción entre la sal de diazonio y NEDA para formar un azo compuesto. Tomado y modificado de Shooter, 1933.

4.3.4 Curva de calibración de nitratos

Para determinar el intervalo de concentraciones en las que se cumple la ley

de Lambert y Beer para esta reacción, es decir que exista un comportamiento

lineal entre las concentraciones de nitratos y la absorbancia, se realizó una curva

de calibración, la cual se preparó a partir de una solución estándar 0.1 M (Thermo,

Cat. 920706). Para ello, se prepararon tres disoluciones de nitratos con

concentraciones de: 73, 7.3 y 0.73 mM, las cuales fueron reducidas (apartado

4.2.2), y posteriormente se tomaron volúmenes entre 100 y 1000 µL para obtener

los puntos de la curva de calibración; La Tabla 6 resume cantidades de nitrato

utilizadas para construir la curva de calibración. Finalmente las diluciones se

procesaron según se indica en el apartado 5.2.3 A partir de estos datos se

obtuvieron los valores de coeficiente de correlación y límite de detección.

Tabla 6. Curva de calibración de nitratos. Disolución (mM) Volumen (µL)

73 1000

500

100

7.3 800

500

300

0.73 500

100

Cantidades de nitrato usadas para la curva de calibración. De lado izquierdo se muestra la concentración en mM de las disoluciones utilizadas para realizar la curva; del lado derecho se muestra el volumen en µL tomado de

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cada disolución para generar los puntos de la curva.

Debido a que la detección de nitratos se está haciendo de manera indirecta,

es necesario considerar la cantidad de nitritos, sin embargo, estos últimos no

presentan valores significativos y restarlos no implicaría ningún contratiempo

para nuestra técnica.

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5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

5.1 Curva de calibración

Para evaluar el comportamiento lineal para la determinación de nitratos

(NO3-), se construyó una curva de calibración de estándares de concentración

conocida de esta sal, tal como fue descrito en el apartado 4.2.4. El método de

cuantificación utilizado es el de estándar externo. Para cada uno de los puntos

mostrados en la curva, se realizaron tres replicas independientes y finalmente se

ajustó a un modelo lineal. En la Figura 9 s e muestra la curva de calibración

obtenida, cuyo intervalo de concentraciones es de 1.1810-4 a 4.710-4 M, el

cual cumple la ley de Lambert y Beer, el coeficiente de absortividad molar

obtenido fue 1701.4 M−1 cm−1, y el modelo lineal tiene un alto coeficiente de

correlación 0.99952.

Para probar que la correlación realmente corresponda a un modelo lineal,

se realizó una prueba de t con la siguiente hipótesis nula y alternativa:

Para la prueba de hipótesis se eligió un α=0.05 y 6 grados de libertad,

obteniendo el valor de t para la prueba de dos colas de 2.45. La t calculada se

obtuvo de la siguiente forma:

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……………….9

Para realizar dicha prueba utilizamos la ec. 8, la cual, nos permitió obtener

el valor calculado de t, este resultado se comparo con el valor de tablas, para ello

utilizamos un α 0.005 y 6 grados de libertad que corresponde a 2.45 en una prueba

de dos colas. El resultado de la prueba mostró que la t calculada es mayor que el

valor de tablas, por lo tanto la pendiente es distinta de 0.

Figura 9. Curva de calibración de nitratos. Esta curva de calibración fue realizada en conjunto con Martínez Sosa en 2015.

5.2 Límites de detección y cuantificación

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Para definir el límite de detección de la técnica propuesta se analizaron los

datos obtenidos mediante la suma de cuadrados y se utilizó la desviación estándar

de los residuos (Sy/x) como una buena aproximación a la desviación estándar del

blanco. Se definió el límite de detección como la lectura de la muestra blanco más

tres veces la desviación estándar de los residuos, de la siguiente forma:

………………………………….10

Adicionalmente, se calculó el límite de cuantificación como el valor del

blanco más diez veces la desviación estándar de los residuos de la siguiente

forma:

……………………………....11

El límite de detección corresponde a una absorbancia de 0.033, equivalente

a 1.9810-5±1,2110-5 M de nitrato; por otra parte, el límite de cuantificación

corresponde a una absorbancia de 0.112, que equivale a 6.6210-5±1.1710-5 M

de nitrato.

5.3 Análisis de nitratos de suelo en un transecto norte-sur

Para la determinación de nitratos en suelos del desierto de Atacama, en el

transecto norte-sur, fue necesario realizar al menos 5 repeticiones de cada

muestra, debido a que el suelo es muy heterogéneo. Cada repetición se realizó en

condiciones independientes, es decir que las 5 repeticiones no se realizaron de

manera simultánea. Adicionalmente, en cada set de análisis, se corrió un blanco de

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agua bidestilada, la cual se utilizó para hacer tanto las extracciones, como

diluciones, entre otras.

Estas muestras se trataron siguiendo los pasos de extracción, reducción y

aplicando el método colorimétrico, como se menciona en los apartados 4.2, 4.2.1,

4.2.2 y 4 .2.3. Los resultados se encuentran resumidos en la Tabla 7 y en las

Figuras 10 y 11.

Tabla 7. Análisis de nitratos en el transecto norte-sur del desierto de Atacama

Muestra Latitud Absorbancia Nitratos

(µmol/gsuelo)

M22 -24.069 0.35 2.92

AT02-31 -24.216 0.12 0.98

AT02-30 -24.401 0.19 1.61

AT02-29 -24.574 0.08 NC

AT02-28 -24.734 0.01 NC

M23 -24.999 0.20 1.57

AT02-27 -25.095 0.36 2.95

AT02-16 -25.305 ~0 ND

AT02-17 -25.797 ~0 ND

AT02-19 -26.353 ~0 ND

AT02-22 -28.118 ~0 ND

AT02-23 -27.022 ~0 ND

NOTA: NC Muestras que se encuentran por debajo del límite de cuantificación

ND Muestras que se encuentran por debajo del límite de detección.

Las muestras M22, AT02-31, AT02-30, AT02-29, AT02-28, M23, AT02-27 y AT02-16

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pertenecen a la zona Norte. Mientras que las muestras, AT02-17, AT02-19, AT02-22 y AT02-23, pertenecen a la zona Sur del desierto.

Las muestras M22, AT02-31, AT02-30, AT02-29, AT02-28, M23, AT02-

27 y AT02-16 pertenecen a la zona más árida del desierto, dentro de la zona de

minas, en ese orden se van ubicando cada vez más hacia el Sur donde la humedad

incrementa; por lo que esperaríamos que gradualmente la concentración de

nitratos decrezca. Sin embargo, de acuerdo a l a Tabla 6 existe una aparente

irregularidad en las concentraciones, las cuales se pueden explicar con aspecto

locales como la orografía y la precipitación pluvial.

La muestra M22 es la más cercana a la zona de Yungay, está última es

considerada la zona de mayor aridez del desierto, la concentración de nitratos es

de las de mayor contenido 2.92 μmol/gsuelo; esta muestra se ubica a 1000m de

altitud, de acuerdo al mapa de la Figura 10, está embebida en una especie de mini

cuenca que lo protege de la entrada de humedad (neblina).

Esperaríamos que las concentraciones de las muestras AT02-31 y AT02-

30 permaneciera similares o bien fueran decreciendo gradualmente, de acuerdo a

la cercanía con M22, pero los valores AT02-31 decrecen hasta 0.98 μmol/gsuelo y

AT02-30 1.61 μmol/gsuelo, esto se puede explicar por las altitudes nuevamente ya

que ambas se encuentran entre 1200 y 1300 m de altitud; Por otro lado, se

esperaría que la muestra AT02-30 tuviera una menor concentración por ser la de

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mayor altitud, pero está s e encuentra más protegida orográficamente, esto lo

podemos ver en la curvas de nivel de la Figura10,

Las muestras AT02-28 y AT02-29 tienen niveles muy bajos de nitratos,

esto se debe a que el terreno comienza a elevarse encontrándose AT02-29 a 1637

m y AT02-28 a 1899 m de altitud, quizás efectos de pendiente u otros no permiten

que los nitratos permanezcan. Al tener cantidades tan bajas en la superficie no es

posible cuantificarlos con esta la técnica colorimétrica. Suponemos entonces que a

mayores profundidades se generan depósitos de ellos.

M23 presenta un incremento en la concentración de nitratos con un valor

de 1.57 µmol/gsuelo, pareciera existir una inconsistencia con lo visto en las

muestras anteriores debido a que está ubicada a 2149m de altitud, los depósitos se

deben a que está por detrás de zonas de mayor elevación y esto es consistente con

las muestra AT02-27 que a pesar de estar ubicada a 2016 m presenta la mayor

concentración de nitratos 2.95 µmol/gsuelo cuya mayor influencia es la orográfica

al encontrarse en una especie de cuenca, lo cual la protege fuertemente de la

entrada de humedad. Cabe mencionar que estas muestras se encuentran en los

límites de las zonas de minas.

Por último, en la zona Norte la muestraAT02-16 presenta un abrupto

descenso en las concentraciones de nitratos; debido a la baja concentración no

puede ser detectado con la técnica colorimétrica. La pérdida de estos se puede

deber a que la zona de muestreo se ubica a una altitud de 1950 m y toda la zona

cerca a la cosa es menor a 1 500 m de altitud permitiendo la entrada de mayor

humedad y eso se puede corroborar por medio de la estación meteorológica de

Taltal, que indica que la precipitación pluvial es de 13 mm anuales, por lo que los

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nitratos al ser muy solubles en agua, se filtran al subsuelo, y no es posible

detectarlos en la superficie.

En la parte norte es difícil explicar el comportamiento de los nitratos, ya

que el gradiente de humedad va de los 3 mm a los 13 mm, por lo que

esperaríamos que hubiera cambios graduales o variaciones poco significativas. Sin

embargo, hemos vistos que existen variaciones abruptas, esto puede deberse a

factores geológicos y climáticos locales; principalmente a l a presencia de la

cordillera de la Costa y la cordillera de Domeyko.

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Figura 10. Muestras del transecto Norte en el desierto de Atacama. Se muestra la precipitación pluvial de las localidades, así como la concentración de nitratos. Las muestras en blanco son no cuantificables.

Finalmente, en la zona sur se esperaba encontrar muy bajas

concentraciones de nitratos, pero no fue posible detectarlos. El resto de las

muestras se encuentran por debajo del límite de detección (0.033 absorbancia) y

también del límite de cuantificación (0.112 absorbancia).En el mapa de la Figura

11, podemos observar las dos estaciones meteorológicas de Cañaral y Copiapo

que muestran medias de precipitación pluvial de entre 13 y 18 mm, lo cual no

sería suficiente para eliminar los nitratos de la superficie, pero al ver

detalladamente el mapa, se observa que las zonas de muestreo se ubican a baja

altitud (1000 m), y hacia la costa desciende a los 500 m ; esto concuerda con

Börge (1973) quien indica que entre los 22° a 26° de latitud S, se encuentran la

Cordillera de la Costa y la Cordillera Media, al rebasar está latitud no hay

ninguna barrera orográfica para la incursión de humedad, afectando de manera

considerable el lavado de los suelos y llevando las sales a mayores profundidades.

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Figura 11. Muestras del transecto Sur en el desierto de Atacama, la humedad aumenta comparada con la zona norte. Las muestras aquí colectadas se encuentran por debajo del límite de detección.

5.4 Variación de nitratos en la zona de Yungay con respecto a l a

profundidad

Para validar nuestra hipótesis, de que los nitratos se acumulan más en la

profundidad, realizamos un estudio de cómo se distribuyen estos compuestos

respecto a la profundidad en la zona más árida del desierto de Atacama, ubicada

en la estación de Yungay. Se analizó una muestra, con sus respectivos perfiles

cada 10 c m hasta 60 c m de profundidad, siguiendo el procedimiento de los

apartados 4.1, 4.2, 4.2.1, 4.2.2 y 4.2.3. En la Tabla 7 se resumen las

características y los resultados obtenidos, cabe destacar que los suelos se tornaban

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menos rojizos a mayor profundidad. Siendo el color de los suelos una variable

importante para conocer sus condiciones.

Tabla 8. Análisis de nitratos, en un perfil, hasta 60 cm de profundidad de la muestra de Yungay.

Profundidad (cm) Absorbancia Nitratos

(μmol/suelo)

10 0.56 4.59

20 0.27 2.21

30 0.48 3.91

40 0.22 1.78 50 0.41 33.51

60 0.63 51.80

Para la determinación de nitratos en los análisis a profundidad del desierto

de Atacama, fue necesario realizar al menos 5 repeticiones de cada muestra,

debido a la heterogeneidad del suelo. Cada repetición se realizó en condiciones

independientes, es decir que las 5 repeticiones no se realizaron de manera

simultánea. Adicionalmente, en cada set de análisis, se corrió un blanco de agua

bidestilada, la cual se utilizó extraer, como para preparar las diluciones, entre

otras.

De acuerdo a l a Figura 12, la concentración de nitratos se mantiene

prácticamente constante desde el nivel superficial hasta los 40 cm de profundidad.

Las variaciones que se observan en la Tabla 7 pueden deberse a la heterogeneidad

del suelo, una forma de disminuir dichas variaciones es incrementando el número

de repeticiones del análisis por punto de muestreo, sin embargo, por el momento

nos vemos limitados a la cantidad de muestra que se posee en el laboratorio.

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Figura 12. Grafica de concentración de nitratos al aumentar la profundidad. Las muestra a 50 y 60 cm de profundidad tienen una concentración alta de nitratos.

Algo evidente es que a partir de los 40 cm de profundidad el incremento de

la concentración de nitratos es sustancial, aumenta casi 3 veces la cantidad, y

quizás pudiera llegar a s er mayor más allá de los 70 cm: sin embargo, no

contamos con muestras a mayor profundidad. Lo cual corrobora la hipótesis de

que a mayores profundidades es mayor la concentración de nitratos encontrados.

5.4.1 Modificación de la téc nica colorimétrica para la determinación

con altas concentraciones de nitratos

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Al realizar el análisis de NO3- de las muestras de suelo Yungay por el

método colorimétrico, pertenecientes a los 50 cm y 60 cm, siguiendo los pasos

4.1, 4.2, 4.2.1, 4.2.2 y 4.2.3, se observó la formación de flóculos (formaciones

granulares suspendidas en la solución), lo cual afecta el valor real en la lectura del

fotómetro (Figura 13), por lo que se procedió a realizar una serie de pruebas con

la finalidad de detectar la posible interferencia en el procedimiento. Utilizamos la

muestra tomada a 60 c m de profundidad debido a que contábamos con una

cantidad suficiente para realizar las pruebas.

Figura 13. Flóculo formado en la muestras a 50 y 60 cm de profundidad. Dichos flóculos impedían una lectura corrcta para nuestros resultados.

El primer paso fue determinar si alguno de los reactivos se contaminó y/o

intervenía en la formación del flóculo. En la Figura 14 se muestran los tubos

resultantes de este experimento, la muestra etiquetada como B0 es el blanco (agua

bidestlada), el tubo etiquetado como normal, es la muestra de suelo, ambas se

analizaron con todos los pasos descritos en los apartados 4.1, 4.2, 4.2.1, 4.2.2 y

4.2.3. Por otro lado, se prepararon tubos con el extracto del suelo (apartados 4.1

y 4.2.1 4.2.2); sin embargo no se cubrió el procedimiento completo en el tubo

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etiquetado como NEDA, no se agregó la sulfanilamida; en el tubo SA, no se

agregó la NEDA, y en el tubo NADA, sólo se realizó la extracción (apartados

4.1, 4.2, 4.2.1). Se utilizó la mitad del extracto de suelo en casa caso.

Figura 14. Prueba para determinar la concentración en la que se forman flóculos que interfieren en la determinación colorimétrica de nitratos

En ningún caso se formó el flóculo. Adicionalmente, se midió el pH, ya

que la acidez es importante para que se lleve a cabo la reacción. En todos los

casos se obtuvo un valor de pH=0, indicándonos que la acidez no estaba

interviniendo. Con estas pruebas se logró descartar la contaminación de los

reactivos. Como en todos los casos se utilizó la mitad del extracto, esto nos indicó

que la concentración del nitrato en la solución extractante podría estar ligado a la

formación del flóculo.

Teniendo el indicio que se trataba de la concentración del analito se

procedió a r ealizar la siguiente prueba, para determinar qué paso influye en la

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determinación del flóculo. Primero se utilizó una solución estándar de nitrito

(NO2-) 0.1 M (Thermo, Cat. 920706), del cual tomamos 1 mL y 500 μL

llevándolo a 1 0 mL en agua destilada y se siguió el apartado 4.2.3, que

corresponde a la formación del compuesto azo. Las concentraciones de nitritos

están en exceso y aún con ello no se formó el flóculo, por lo que la formación de

este debe deberse al paso de la reducción (apartado 4.2.1), es decir en la cantidad

de Zn/NaCl. La Tabla 8 resume los resultados.

Tabla 9. Prueba de nitritos

Muestra Solución estándar

0.1M Observaciones

Blanco - No hay precipitado Experimento 1 1 mL Sin flóculo Experimento 2 500 µL Sin flóculo

El paso determinante para la formación del flóculo es la reducción de

nitrato a nitrito (apartado 4.2.2). Se planeó otro experimento, el cual consistió en

un set de tubos a d iferentes concentraciones, utilizando una solución estándar

(0.1M NaNO3Thermo), llevada a 1 0 mL, la idea es determinar a qué

concentración se presenta la interferencia, los resultados pueden observarse en a

Tabla 9. En la muestra 4 se obtiene un flóculo similar al de las muestras de suelo,

esto nos da un indicio sobre las concentraciones presentes en los suelos de

Atacama. Debido a que no se posee gran cantidad de suelo, se siguió utilizando la

solución estándar para determinar, que diluciones son las adecuadas para la

determinación colorimétrico.

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Tabla 10. Prueba para determinar la concentración en la que se forman floculos que interfieren en la determinación colorimétrica de nitratos.

Muestra Solución estándar llevada a 10 mL Observaciones

Control (-) Sin coloración

Control (+) 0.5 mL de NaNO3 al 0.01 M Sin flóculo.

1 7.5 mL de NaNO3 al 0.1 M Formación de flóculo.

2 2.5 mL de NaNO3 al 0.1 M Formación de flóculo.

3 1 mL de NaNO3 al 0.1 M Formación de flóculo, similar al de nuestras muestras a profundidad.

4 0.5 mL de NaNO3 al 0.1 M Formación flóculo.

Finalmente, se realizaron pruebas para ver si el orden en la dilución, antes

o después de llevar a cabo la reducción afectaba la determinación colorimétrica de

los nitratos; concluimos que la mejor opción era realizar la dilución de la muestra

después de la reducción, es decir entre el apartado 4.2.2 y 4.2.3.

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6. CONCLUSIONES

La técnica colorimétrica es una excelente opción para la determinación y

cuantificación de nitratos y nitritos en suelos; debido a q ue no presenta

interferencias por la presencia de iones como los percloratos, presentes en los

suelos de Atacama y de Marte.

La técnica es capaz de detectar nitratos en solución acuosa con límites

detección de 1.9810-5±1.2110-5 M y cuantificación de 6.6210-5±1.1710-5

M. Intervalos de concentración en el que muestra un comportamiento lineal, con

un coeficiente de correlación de 0.999, y un límite de confianza de 95%.

Cuando la concentración de NO3- en solución es elevada, la técnica para

determinarlo no es eficiente por la formación de un flóculo.

La técnica fue utilizada para detectar indirectamente nitratos en suelos del

desierto de Atacama en un transecto de humedad norte-sur, a partir de la zona de

Antofagasta y hasta la zona de Copiapó. Se esperaba encontrar alguna tendencia

entre las zonas de muestreo (N-S) con respecto a la cantidad de nitratos. Sin

embargo, esto no ocurrió, al parecer hay eventos locales como incursión de

neblinas que predominan en ciertas zonas donde la humedad de la costa puede

incursionar pero en otras, donde la presencia de colinas genera una barrera

orografía que impide el paso de humedad como en la zona de Yungay. Por esta

razón, creemos que los valores altos se deben a zonas que no experimentan

eventos de humedad mientras que en zonas cercanas pero con valores de nitratos

menores si los están.

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En la zona sur la humedad incrementa sustancialmente debido a las

incursiones de vientos del Polo sur, y debido a que los nitratos son tan solubles, la

cantidad disminuye de tal forma que no se pueden cuantificar y en algunos casos

detectar.

Debido a las variaciones encontradas en la concentración de nitratos en las

muestras de suelo de la zona norte del desierto, se realizó un análisis a

profundidad en la zona de Yungay, considerada la más árida del desierto. Ahí se

determinó que entre los 10 y 40 c m de profundidad, los NO3- se distribuyen de

manera uniforme, mientras que entre los 50 y 60 cm existe un incremento

significativo.

Estos resultados son importantes para estudiar la presencia de nitratos en la

superficie de Marte ya que nos podrían servir como indicador indirecto de la

exposición de los suelos a la humedad que ha experimentado Marte en los últimos

millones de años.

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7. PERSPECTIVAS

La técnica que hemos optimizado se puede utilizar para estudiar muestras

de suelo a diferentes profundidades en el desierto de Atacama, ya que es de interés

estudiar la profundidad máxima en la que los nitratos de depositan a

profundidades mayores a los 60 cm, y estudiar la influencia de la infiltración. Con

estos análisis se podrá entender mejor la distribución de los nitratos en dicho

desierto.

La técnica utilizada requiere una gran cantidad de NaCl, como vehículo

para el Zn, por lo que sería adecuado evaluar si es posible disminuir la cantidad

utilizada, ya que su presencia induce la formación de flóculos.

Se cuenta con un experimento de lluvia artificial en el Desierto de

Atacama en la zona de Yungay, por lo que esta técnica podría ser utilizada para

estudiar la pérdida de nitratos en el suelo, y evaluar como la humedad afecta la

concentración de los nitratos en la superficie. Debido a la baja eficiencia que

muestra nuestra técnica colorimétrica en zonas con bajo contenido de nitratos,

para poder cuantificar y detectar nitratos es necesario hacer mejoras.

Estos estudios son importantes para entender la posible acumulación de

nitratos en Marte, ya que estos son esenciales para la vida. La eficiencia de esta

técnica permitirá entender los resultados que está obteniendo la misión Curiosity

en Marte, así como futuras misiones que se envíen al planeta rojo.

Se espera poder utilizar una técnica acoplada a T GA-DSC-MS para

analizar muestras del suelo de Atacama y con estos resultados y los obtenidos

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podríamos realizar una comparación para poder interpretar los datos enviados por

la misión Curiosity.

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