PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
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I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 1 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 1
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
1. Introdução
Os contadores hematológicos YUMIZEN H2500 foram designados para realização do
hemograma automatizado, que realiza a contagem e diferencial de células hematológicas. As
anormalidades encontradas e sinalizadas pelo equipamento serão analisadas pelo observador,
mediante parâmetros estabelecidos pelo laboratório.
2. Objetivo
Este Procedimento Operacional Padrão (POP) foi elaborado pela Seção de Hematologia e
tem como produto final o passo a passo nos equipamentos YUMIZEN H2500.
3. Campos de aplicação
Setor de Hematologia.
4. Referências normativas
Resolução n° 302, de 13 de outubro de 2005: dispõe sobre regulamento técnico para
funcionamento de laboratórios clínicos.
5. Responsabilidade / competência
Médico patologista: análise citológica, avaliação e verificação do resultado do exame.
Biomédico: análise citológica, avaliação e verificação do resultado do exame.
Bioquímico: análise citológica, avaliação e verificação do resultado do exame.
Técnico de patologia clínica: realização do exame.
6. Definições
Não se aplica.
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Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 2
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
7. Conteúdo do padrão
7.1 Recursos necessários
Mão de obra especializada
Reagentes
Equipamento YUMIZEN H2500
7.2 Principais passos
A. Mnemônico (s):
1. HCOS
2. RETS.
B. Sinonímia:
1. Para hemograma:
i. Hemograma Completo
ii. Hemograma com contagem de Plaquetas;
iii. Série Branca e Série Vermelha.
2. Para reticulócitos:
i. Índice Reticulocitário
ii. Índice de Produção de Reticulócitos
iii. Índice de Produção Eritrocitária
vi. Tempo de Maturação
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
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Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
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ASSINATURA E CARIMBO 3
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
C. Princípio:
1. O Yumizen H2500 é um analisador hematológico automatizado quantitativo multi-
parâmetros, utilizado para realizar diagnósticos in vitro no rastreio de populações de
pacientes em laboratórios clínicos.
2. A partir das medições de absorbância e resistência dos leucócitos, desenvolve-se uma
matriz com volumes celulares no eixo X e absorbância no eixo Y. O estudo da imagem da
matriz permite clara diferenciação das populações de leucócitos. Os limiares das
populações celulares (alguns móveis, outros fixos) fornecem os limites de normalidade para
as morfologias dos leucócitos. As alterações na morfologia de determinada população são
expressas na matriz por um deslocamento em relação à população correspondente. Os
limiares fixos aparecem em azul, e os móveis, em vermelho, na imagem abaixo. Os
limiares pretos acompanham os vermelhos, quando a matriz é ajustada. A matriz permite
calcular a porcentagem da população de leucócitos de acordo com o seguinte diagrama:
Ruído de fundo baixo e Ruído de fundo alto não estão incluídos nas caixas de TNC. No modo 5DIFF, a porcentagem
é diferente do modo 8DIFF, pois o resultado é calculado com caixas de LMNE no lugar de TNC; mas o valor absoluto
é o mesmo.
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ASSINATURA E CARIMBO 4
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
a. Linfócitos: Linfócitos são células arredondadas muito pequenas com citoplasma
condensado e núcleo grande. Estas células costumam posicionar-se na parte inferior do
eixo Y, bem como na parte esquerda do eixo X do volume, devido ao seu tamanho
pequeno.
b. Monócitos: Monócitos são células muito grandes de formato irregular com núcleo oval
ou em forma de rim, que pode ser dobrado. O citoplasma também é grande, com
material intracelular de natureza não granulada, podendo conter vacúolos. Estão
posicionados na parte inferior do eixo Y. Devido ao seu grande tamanho, os monócitos
ocupam a área à direita dos linfócitos.
c. Neutrófilos: Neutrófilos são células de tamanho médio. Eles contêm material granular
no seu citoplasma, juntamente com um núcleo segmentado. Por causa desses
elementos celulares, os neutrófilos são posicionados no eixo X entre os linfócitos e os
monócitos, mas mais acima no eixo Y, de acordo com sua maturidade. A
hipersegmentação e o aumento na quantidade de grânulos situam estas células em uma
região mais alta no eixo Y.
d. Eosinófilos: Os eosinófilos assemelham-se aos neutrófilos. Eles contêm material
granular e núcleo segmentado dentro do citoplasma. Devido à maior granulação, os
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 5 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 5
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
eosinófilos ocupam a parte mais elevada do eixo Y. A hipersegmentação e o aumento da
quantidade de grânulos fazem esta população distribuir-se pela área superior direita da
matriz.
e. Basófilos: Devido à baixa percentagem de basófilos em comparação com o restante
dos leucócitos, eles têm sua própria medição separada, e seu próprio histograma.
f. Células grandes imaturas (LIC): As células grandes imaturas ocupam a parte direita do
eixo X, na matriz estendida. Elas se dividem em três populações distintas:
Os IML, situados na parte inferior da parte estendida da matriz, representam mais a
presença da linhagem linfoide imatura.
Os IMM, situados no centro da parte estendida, podem separar os monócitos
grandes e os elementos imaturos da linhagem monocítica.
Os IMG, situados na zona superior da parte estendida, geralmente contêm formas
imaturas de células granulocíticas com alto potencial de dispersão de luz (conteúdo
intracelular complexo). Células granulocíticas imaturas (IMG) são detectadas pelo
seu maior volume e pela maior quantidade de grânulos, que permitem maior
passagem de luz pelas células e aumentam a intensidade da difusão de luz.
Portanto, células como os metamielócitos são encontradas à direita dos neutrófilos e
quase ao mesmo nível. Mielócitos e promielócitos são encontrados em posição de
saturação à extrema direita da matriz. Metamielócitos, mielócitos e promielócitos são
todos classificados como LIC, e têm seus resultados incluídos no valor dos
neutrófilos. Os blastos costumam situar-se à direita dos monócitos e, assim,
aumentam a contagem de LIC. Um alarme de Blastos é gerado pelo aumento das
contagens dentro da área de LIC. Está correlacionado com a detecção de blastos no
histograma de basófilos.
g. Linfócitos atípicos (ALI): Linfócitos grandes são geralmente detectados na área de ALI,
onde também podem ser encontradas formas linfóides reativas, linfócitos estimulados e
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00 12/08/2020 6 de 56 Emissão
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Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
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ASSINATURA E CARIMBO 6
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
plasmócitos. Pequenos blastos são encontrados entre populações de monócitos e
linfócitos normais.
h. Eritroblastos (NRBC): Eritroblastos são hemácias imaturas com núcleo. O citômetro de
fluxo detecta os núcleos das células NRBC liberados depois que o Nucediff faz a lise de
suas membranas. Por causa de seu tamanho pequeno e baixa absorbância, esses
elementos são posicionados na parte esquerda da população de linfócitos da matriz.
Nessa zona, também encontramos os agregados plaquetários. O equipamento
consegue diferenciá-los dos eritroblastos, graças a algoritmos específicos. Em todos os
casos, os NRBC e os agregados plaquetários não são incluídos nas contagens de WBC.
i. Ruído de fundo: Divide-se em duas partes:
Ruído de fundo baixo: o ruído de fundo baixo encontra-se no canto inferior esquerdo
da matriz. Ele não é incluído nas caixas de TNC, por isso não conta no número de
células sanguíneas. São gerados alarmes quando os agregados plaquetários e restos
de fragmentos de células RBC são encontrados nessa área.
Ruído de fundo alto: o ruído de fundo alto encontra-se no lado esquerdo da matriz.
Ele contém as células RBC que resistiram à lise.
D. Parâmetros:
Abreviação Parâmetro
Células da Série Branca WBC Células da Série Branca LIN% Contagem proporcional de linfócitos LIN # Contagem absoluta de linfócitos MON% Contagem proporcional de monócitos MON # Contagem absoluta de monócitos NEU% Contagem proporcional de neutrófilos NEU # Contagem absoluta de neutrófilos EOS% Contagem proporcional de eosinófilos EOS # Contagem absoluta de eosinófilos BAS% Contagem proporcional de basófilos BAS# Contagem absoluta de basófilos LIC%* Contagem proporcional de células imaturas
grandes
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 7 de 56 Emissão
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Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 7
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
LIC#* Contagem absoluta de células imaturas grandes ALY%* Contagem proporcional de linfócitos atípicos ALY#* Contagem absoluta de linfócitos atípicos IMG%* Contagem proporcional de granulócitos imaturos IMG#* Contagem absoluta de granulócitos imaturos IML%* Contagem proporcional de linfócitos imaturos IML#* Contagem absoluta de linfócitos imaturos IMM%* Contagem proporcional de monócitos imaturos IMM#* Contagem absoluta de monócitos imaturos
Células da Série Vermelha RBC Células da Série Vermelha HGB Concentração de hemoglobina HCT Hematócrito VCM Volume Corpuscular Médio HCM Hemoglobina Corpuscular Média CHCM Concentração da Hemoglobina Corpuscular Média RDW Largura de Distribuição da Série Vermelha PLT Plaquetas PDW Largura de Distribuição Plaquetária VPM Volume Plaquetário Médio PCT Plaquetócrito
Reticulócitos
RET% Contagem Proporcional de Reticulócitos RET# Contagem Absoluta de Reticulócitos RETL% Reticulócitos imaturos
E. Linearidade dos Equipamentos:
LIMITES DOS PARÂMETROS PARÂMETROS AFETADOS
WBC > 150 X 103 /mm3 WBC e ERB#
RBC > 8 X 106 /mm3 RBC e RET#
HGB > 24g/dl HGB
HCT > 67% HCT
PLT > 1900 X 103 /mm3 PLT
RET% > 100% RET%
ERB% > 999% ERB%, ERB#
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 8 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 8
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Faz-se necessário diluição quando os parâmetros acima encontrarem-se acima desses
limites. O resultado vem associado a um sinalizador “D” e a diluição deve ser feita com o
reagente ABX Diluent (usualmente se faz diluição 1:2). Deve-se repassar a alíquota diluída
no equipamento novamente e analisar o parâmetro que saiu fora da linearidade; atentar
aos outros parâmetros, pois estes terão seus resultados pela metade devido a diluição 1:2.
NOTA: O sinalizador “D” sugere que se faça diluição quando os parâmetros encontram-se
fora da faixa de limites. Isso é diferente de SUBSTITUIR PLASMA, que interfere na
distribuição das células. Vide Anexo IX.
F. Limite de Quantificação do Equipamento
É a concentração mais baixa na qual o analito não só pode ser detectado de forma segura,
mas no qual são satisfeitos alguns objetivos predefinidos de viés e imprecisão.
PARÂMETROS LIMITE
WBC 0,2 X 103 /mm3
RBC 0,3 X 106 /mm3
HGB 0,8 g/dL
HCT 2%
PLT 10 X 103 /mm3
RET# 0,0 X 106 /mm3
G. Fase pré-analítica:
1. Material:
Sangue
2. Preparo do paciente:
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 9 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 9
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Jejum de 8 horas é desejável, embora casos urgentes ou hospitalizados não necessitem
deste preparo. Anotar medicamentos em uso nos últimos sete dias.
3. Obtenção da amostra:
Punção venosa (e, em certos casos, arterial) com amostra colhida em anticoagulante
EDTA (ácido etilenodiamino tetra-acético) padronizado em tubos para volume de 1 a
5mL. O tubo deverá ser homogeneizado por inversão cuidadosamente por cerca de
cinco vezes sem agitação. Colher a amostra conforme orientações descritas no “PRS
LAB COL - 001 COLETA DE SANGUE VENOSO E ARTERIAL”.
4. Armazenamento e estabilidade da amostra:
i. Deve-se realizar o procedimento no menor intervalo de tempo possível;
ii. Após a recepção da amostra, a identificação deve ser observada;
iii. De uma maneira geral, o teste deve estar analisado dentro de 5 horas após a coleta,
mas caso haja problemas logísticos ou na aparelhagem, resultados aceitáveis
podem ser obtidos, para os parâmetros reticulócitos e série vermelha, pela
refrigeração das amostras com armazenamento na geladeira a 2-8ºC até por 48
horas, e para os parâmetros eritroblastos e contagem diferencial de leucócitos, por
até 24 horas em geladeira.
5. Critérios de rejeição da amostra:
i. Presença de coágulos;
ii. Uso de anticoagulante inadequado;
iii. Tempo inadequado ou armazenagem inadequada da amostra;
iv. Atenção especial deve ser dada a amostras onde pequenos volumes sejam
necessários, como no berçário e em Centro de Tratamento Intensivo infantis. Nestes
casos, volumes menores podem ser tolerados, mas coágulos devem ser
especialmente procurados e, se encontrados, as amostras devem ser rejeitadas.
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I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 10 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
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ASSINATURA E CARIMBO 10
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
6. Substâncias com interferência conhecida:
i. Hemólise;
ii. Lipemia;
iii. Icterícia;
iv. Precipitação de imunoglobulinas;
v. Crioglobulinas;
vi. Aglutinação plaquetária;
vii. Hemácias aglutinadas.
H. Fase Analítica:
Reagentes:
ABX Diluent (20 litros) → para diluição de RBC/PLT, sistema sequencial e enxágue;
ABX Basolyse (5 litros, integrado) → para contagem de BAS;
ABX Cleaner (1 litro, integrado) → para limpeza;
ABX Fluocyte (500mL, integrado) → para contagem de reticulócitos e plaquetas no canal ótico;
ABX Lysebio (1 litro, integrado) → para medição de hemoglobina;
ABX Nucediff (1 litro, integrado) → para diferenciação de LMNE e células imaturas e contagem de
Eritroblastos;
Minoclair (Solução de limpeza) → para procedimento de limpeza concentrada;
Controle DIFFTROL PX (Hemograma);
Controle MINOTROL RETIC (Reticulócitos);
Minocal (Calibrador).
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00 12/08/2020 11 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 11
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Rotina de Trabalho
1. Para iniciar o Yumizen H2500: Se for o caso, verificar o recipiente de resíduos
2. Para reiniciar um instrumento H2500 após o modo de espera:
a. Um desligamento (shutdown) foi realizado antes ou o instrumento está no modo de espera
por causa de inatividade. Pressione o botão liga / desliga no lado direito do instrumento (na
frente)
b. A tela de LOGIN aparecerá
3. Para ligar o instrumento:
a. Pressione o botão do interruptor de energia na parte traseira do instrumento. Você pode
começar
b. Ligue o Compressor Yumizen. Aguarde que o instrumento seja inicializado. A tela LOGIN é
exibida
4. Para iniciar sessão na aplicação:
a. Você iniciou o instrumento e a janela LOGIN é exibida.
b. Selecione um nome de usuário e sua senha.
c. Selecione a opção Nova Sessão se quiser começar com uma nova lista de trabalho.
Criar uma nova sessão consiste em:
Excluir os pedidos não tratados da sessão anterior.
Excluir alarmes reconhecidos.
Arquivar os resultados da sessão anterior. A tela inicial é exibida.
5. Para verificar os reagentes ou trocar reagentes
Selecione a aba que aciona o alarme de reagente no analisador ou teclar em reagentes e
consumíveis
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REVISÃO DATA Nº
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 12 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 12
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
a. Pressione Alterar na frente do reagente que deseja alterar;
b. Digite o número do lote do novo reagente (ou passe o leitor de código de barras);
c. Remova o reagente antigo e coloque o novo;
d. Selecione a opção do reagente prime se quiser iniciar o novo reagente;
e. Pressione Confirmar para validar.
6. Para realizar uma inicialização manual (Start-up):
A barra de status da tela inicial mostra:
Yumizen H2500: INICIALIZADO
a. Pressione Inic.
b. Equipamento realizará um branco (ruído de fundo). Quando finalizar aparecerá a tela de
ruído de fundo.
A tela da barra de status mostra PRONTO no analisador
** Você pode consultar os resultados de inicialização na tela Início> Registros > Verificação de
ruído de fundo.
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 13 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 13
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
7. Calibração e Controle de Qualidade
7.1. Calibração
- Princípios básicos: A calibração é um procedimento sofisticado que só pode ser executado
por pessoal qualificado pela Assistência Técnica do fabricante, e/ou por pessoas
habilitadas. A calibração é feita com sangue calibrador comercial (Minocal) (sistema aberto)
e o procedimento segue o protocolo descrito no “Manual do Usuário”.
- Periodicidade: 1) Após manutenções corretivas extensas (por exemplo - com troca de
componentes principais) e após manutenção preventiva; 2) Quando indicada pelo Controle
Interno da Qualidade.
NOTA: A calibração deve ser considerada o último passo em uma sequência de correção de um
“troubleshooting”, pois a realização de calibrações desnecessárias pode mascarar um problema
subjacente.
7.2. Controle de Qualidade: O controle de qualidade no setor de hematologia é realizado de
duas maneiras, as quais
- Passagem de sangue controle comercial em três níveis: alto, baixo e normal para os
exames de hemograma e reticulócitos, sendo o controle Difftrol designado para a avaliação
do hemograma (Série Branca, Vermelha e Plaquetas) e o controle Minotrol Retic designado
para a avaliação dos reticulócitos;
- Passagem de sangue de paciente (10 vezes) para a análise de precisão (repetibilidade) no
módulo fechado (automático/rack).
- Teste de Repetibilidade (Controles Internos): A repetibilidade baseia-se no conjunto de
resultados obtidos das análises consecutivas da mesma amostra normal de sangue
humano fresco. A repetibilidade com amostras de pacientes é uma forma complementar
comum de controle de qualidade para se verificar a variabilidade do sistema analítico,
estabelecendo média e coeficiente de variação. No setor de Hematologia a amostra é
analisada repetidamente 10 vezes em módulo fechado (automático/racks) nos dois
equipamentos e nas mesmas condições. Para executar o procedimento, seguir os passos:
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 14 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 14
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
i. Acesso: Menu → Garantia da Qualidade → “Repetibilidade” → “Nov Rep”;
ii. Insira ID da amostra escolhida;
iii. Selecione o teste a ser realizado entre DIF e DIR;
iv. Selecione modo automático;
v. Alterar “Nº de ensaios” para 10;
vi. Confirmar;
vii. Colocar a rack com a amostra no equipamento;
viii. Pressione In. anál. na barra de ferramentas contextual;
ix. Inserir o pen drive e “printar” a tela para a impressão dos resultados (6 “prints”
no total);
x. A repetibilidade é avaliada comparando o coeficiente de variação gerado após
as 10 passagens com valores preestabelecidos. Os dados de comparação,
segundo manual do fabricante, são:
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 15 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
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ASSINATURA E CARIMBO 15
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
xi. Havendo discrepâncias, analisar a possível causa (limpeza das câmaras, troca
de amostras, etc.) ou entrar em contato com a assistência técnica para
devidas providências.
Como processar controle de qualidade:
a. Modo Rack:
Certifique-se de ter cadastrado o lote de controle antes de executá-lo para que ele não seja
executado como uma amostra de sangue. A amostra de controle é identificada com uma
etiqueta de código de barras.
Prepare seu sangue de controle de acordo com as instruções específicas detalhadas na
bula (temperatura, homogeneização, etc.).
Verificar que a posição da etiqueta está visível para o leitor de código de barras interno.
Não coloque amostras de controle com amostras de pacientes no mesmo rack.
Coloque o suporte na bandeja de carga do instrumento (parte de baixo).
Pressione In. rack.
Quando a análise é concluída, os resultados de CQ são adicionados automaticamente ao
CQ Tela de resultados
A rack é ejetada na bandeja de ejeção do instrumento (parte de cima)
O indicador CQ da barra de status fica vermelho se uma das regras Westgard habilitadas
no equipamento forem violadas; se o status ficar verde, então os controles foram validados.
b. Modo STAT ou MANUAL:
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TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Pressione o modo Mod. Urg.
Digite o número do lote no campo Sample ID (manualmente ou usando o leitor de código
de barras externo
Pressione Tubo controle. Os campos serão preenchidos automaticamente
- Tipo de amostra
- Teste
- Caixa de seleção do tubo de controle selecionada.
Misture delicadamente o sangue de controle.
Coloque o tubo no suporte do tubo
Certifique-se de que o suporte do tubo esteja na posição apropriada (veja a figura)
Certifique-se de que a tampa do tubo pode ser perfurada. Caso contrário, remova a tampa.
Pressione Iniciar análise
Quando a porta se abrir, retire o tubo do suporte do tubo e reensaie, se necessário.
8. Como inserir controle de Qualidade no Yumizen (via USB) – NOVO LOTE
OBS: Primeiramente tem que entrar no site e salvar no pendrive:
Entrar no Google em: Banco de Documentos Horiba
Clicar em Banco de Documentos Horiba
Clicar em: Go to Horiba-ABX Documentation Data Base
Clicar em: Hematology
Em Documents escolhe: Quality Control Target; Em Instruments: escolhe o equipamento
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ASSINATURA E CARIMBO 17
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Search
Depois escolhe a opção do controle com lysebio e o equipamento
Salvar no pendrive a opção (laranja): Download Target Values de acordo com o lote
a. Clicar em:
b. Clicar em:
c. Clicar em novo lote:
d. Após abrir esta janela:
e. Clicar no teclado:
f. Clicar em importar:
g. Clicar em confirmar:
h. A opção ATIVAR LOTE, desativa o lote anterior automaticamente.
Se for trabalhar com média própria, NÃO ATIVAR na hora da instalação, acompanhar
aproximadamente 20 corridas antes de ativar
9. Como inserir / mudar média própria do controle:
Garantia da Qualidade
Resultados de CQ
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PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 18 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 18
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Valores
Editar Alvos
Alvo (digitar os novos valores de cada parâmetro)
10. Como inserir controle de Qualidade no Yumizen (manual) – NOVO LOTE
a. Clicar em:
b. Clicar em:
c. Clicar em novo lote:
d. Após abrir esta janela:
e. Coloca o lote (pistola o cód. de barras) e a data de expiração.
f. Cadastra os valores dos 3 níveis, conforme a bula.
g. Confirmar:
11. Como analisar os controles:
a. Clicar em:
b. Clicar em Resultados de CQ
c. Clicar em Valores, aparecerá:
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 19 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 19
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Para ver os parâmetros, utilizar a seta de rolamento
d. Para ver os gráficos de Leving Jenning, teclar em Lev-Jenn
Aparecerá a tela acima. Para mudar os parâmetros, teclar em Próx. Parâm. Vai aparecendo na
tela outros parâmetros.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 20 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 20
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
12. Como processar amostra em MODO RACK:
a. Coloque os tubos em qualquer rack e posição com a etiqueta em posição visível (o número
da rack deve estar virado para o operador)
b. Pressionar In. Rack
13. Como processar amostra de paciente em MODO ABERTO ou URGÊNCIA:
a. Pressione o modo Mod. Urg.
b. Digite o número do lote no campo ID Amostra (manualmente ou usando o código de barras
externo leitor).
c. Pressione consulta GD. Os campos da ordem são preenchidos automaticamente
Tipo de amostra (exceto Líquidos Biol.)
Teste (DIFF, RET, PLT-O, exceto Líquidos Biol.)
Informações (dados do paciente)
d. Homogeinize a amostra
e. Coloque o tubo no suporte do tubo
f. Certifique-se de que o suporte do tubo esteja na posição apropriada, se não, gire o suporte
de tubo.
g. Certifique-se de que a tampa do tubo pode ser perfurada. Caso contrário, remova a tampa.
h. Pressione Iniciar análise na barra de ferramentas contextual.
i. Quando a porta se abrir, retire o tubo do suporte do tubo, não há necessidade de empurrar
a porta para fechar o compartimento, basta clicar em: (Sair urg.)
j. Obs.: Processar Reticulócitos → É necessário modificar o módulo de operação do
equipamento para DIR (para processar hemograma e reticulócitos) ou RET (para processar
apenas reticulócitos), quando for passar as amostras em modo manual.
14. Procurar paciente do dia:
a. Clicar em Ger. de Tubos
b. Clicar em Lista de resultado
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 21 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 21
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
c. Filtro
d. Marcar ID da amostra e ler o código de barras.
e. Aplicar
f. Marcar o resultado
g. Para ver: clicar em Ver. detalh.; Para enviar para a LIS: Transferir
15. Procurar paciente no Arquivo:
a. Clicar em Ger. de Tubos
b. Clicar em: Arquivo
c. Escolher em PER: Sessão Ant.; Menos de 1 semana; Menos de 1 mês; Qualquer data
d. Em ID: ler ou digitar o cód. de barras
e. Marcar o resultado
f. Para ver: clicar em Ver. detalh.; Para enviar para a LIS: Transferir
Manutenção:
Manutenção Diária Yumizen H2500:
1. Start-up ou Iniciar ou Ruído de fundo
2. Limpeza concentrada ou Limpeza Minoclair: Solicitada automaticamente há cada 1000
amostras processadas.
3. Shutdown Manual para Desligamento:
a. Pressione Desligar.
b. Selecione Log out.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 22 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
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ASSINATURA E CARIMBO 22
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
O desligamento consiste em: um ciclo de limpeza do analisador.
No caso em que o instrumento solicita você a executar um desligamento Minoclair, proceda do
seguinte modo:
Prepare o seguinte:
- ABX Minoclair
- Minoclair Cup (frasco de acrílico)
- Minoclair Holder
Pressione Desligar Minoclair. O suporte do tubo sai.
Encha o Minoclair Cup até a marca de 20 mL com ABX Minoclair e coloque-o dentro do
Holder de Minoclair.
Coloque o suporte Minoclair no lugar do suporte do tubo.
Pressione Avançar.
O ciclo começa e dura cerca de 15 minutos.
Quando terminar o ciclo, pressione Avançar.
Coloque o suporte do tubo de volta em seu lugar.
Agora você pode fechar sua sessão no instrumento.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 23 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 23
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Manutenção Semanal Yumizen H2500:
2x por semana limpeza Minoclair:
1. Manutenção
2. Solução de problemas
3. Limpeza Minoclair
4. Encha o Minoclair Cup até a marca de 20 mL com ABX Minoclair e coloque-o dentro do Holder
de Minoclair
5. Coloque o suporte Minoclair no lugar do suporte do tubo.
6. Pressione Avançar.
O ciclo começa e dura cerca de 15 minutos.
7. Quando terminar o ciclo, pressione Avançar.
8. Coloque o suporte do tubo de volta em seu lugar.
Procedimentos Diários Yumizen H2500:
Estes procedimentos devem ser realizados todos os dias no início do plantão diurno (7h):
1. Encerrar tudo → encerrar limpeza;
2. Inicializar tudo;
3. Logout → confirma (login e senha: LABTECH);
4. Verificar volumes dos reagentes;
5. Passar controles → colocar os controles na rack (Difftrol e Minotrol);
6. Trocar tampão (H2O de torneira);
7. Dar prime nos reagentes do SPS (exceto no metanol): Manutenção → Solução de Problemas
→ Yumi SPS;
8. Fazer lâminas teste;
9. Repetibilidade.
Descrição dos Alarmes
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 24 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 24
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Diff Anormal
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: NEU (#,%), LIC (#,%) e IMG (#,%)
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: MON (#,%), LIC (#,%), IMM (#,%)
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: LIN (#,%), NEUT (#,%)
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 25 de 56 Emissão
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Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 25
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: MON (#,%), LIN (#,%), NEU (#,%)
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: MON (#,%), NEU (#,%)
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: EOS (#,%), NEU (#,%)
Ruído DIFF
- Sinalizador * nos seguintes parâmetros: WBC, EOS (#,%), NEU (#,%), MON (#,%), NEU (#,%),
BASO (#,%), ALI (#,%), LIC (#,%), NRBC (#,%).
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 26 de 56 Emissão
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Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 26
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
- Sinalisador * nos seguintes parâmetros: WBC, EOS (#,%), NEU (#,%), MON (#,%), NEU (#,%),
BASO (#,%), ALI (#,%), LIC (#,%), NRBC (#,%).
Reticulócitos
I. Fase Pós-Analítica
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
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ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 27 de 56 Emissão
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ASSINATURA E CARIMBO 27
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
i. Análise e liberação final de resultados
Essa fase se inicia após a obtenção dos resultados das amostras processadas, onde
é realizado análise crítica dos resultados, levando-se em consideração idade,
procedência da amostra, dados clínicos, alarmes liberados nos laudos dos exames
(Anexo IV) realizados nos contadores eletrônicos e limites de contagem celular
mínimo e máximo.
É de extrema importância que os critérios de interfaceamento adotados pelo Setor
de Hematologia sejam avaliados, garantindo o correto aproveitamento da tecnologia
dos contadores celulares automáticos, a autenticidade dos resultados e o correto
apoio ao diagnóstico do paciente. Além disso, existem limitações que interferem nas
análises dos parâmetros pelo aparelho, como exemplificado a seguir:
1. WBC
i. Os resultados de WBC que excedem os limites de linearidade do sistema
exigem diluição da amostra de sangue (ex: amostra de leucemia seguida por
leucopenia). A repetição da análise da amostra diluída permite a obtenção do
valor de análise correto;
ii. Hemácias não lisadas - Em algumas raras ocasiões, os eritrócitos da amostra de
sangue podem não estar completamente lisados. Essas células não lisadas
podem ser detectadas no histograma de WBC com um alarme EL. Eritrócitos
não lisados causam uma contagem de WBC falsamente elevada;
iii. Mieloma múltiplo - A precipitação de proteínas em pacientes com mieloma
múltiplo pode causar contagens elevadas de WBC;
iv. Hemólise - Espécimes hemolisados contêm estroma de células vermelhas, que
pode aumentar as contagens dos leucócitos;
v. Leucemia - Essa doença pode provocar uma contagem muito baixa de WBC
devido ao possível aumento da fragilidade dos leucócitos, que leva à destruição
de algumas dessas células durante a contagem. Esses fragmentos também
interferem com os parâmetros diferenciais parciais dos leucócitos: LIN% + #,
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 28 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 28
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
MON% + #, GRAN% + #. Uma baixa contagem suspeita de WBC pode ser
observada em pacientes com leucemias linfocíticas devido à presença de
linfócitos anormalmente pequenos que o equipamento não consegue contar;
vi. Quimioterapia - As drogas citotóxicas e imunossupressivas podem aumentar a
fragilidade dos leucócitos, o que pode causar contagens baixas de WBC;
vii. Crioglobulinas - O aumento nos níveis de crioglobulina decorrente de mieloma,
carcinoma, leucemia, macroglobulinemia, distúrbios linfoproliferativos, tumores
metastáticos, doenças auto - imunes, infecções, doenças idiopáticas, aneurisma,
gravidez, fenômenos tromboembólicos, diabetes, etc., pode elevar as contagens
de WBC, RBC ou PLT e o valor de HGB. O espécime pode ser aquecido até
37ºC e re-analisado imediatamente ou através de uma contagem manual WBC,
RBC ou PLT;
viii. Aumento de turbidez - também pode ser observado nos casos em que as células
sanguineas vermelhas são resistentes à lise. Isso causa um resultado
falsamente elevado de HBG, que pode ser detectado através da observação dos
valores anormais de HCM e CHCM. Resultados errados da hemoglobina
provocam erro também nos resultados de HCM e CHCM;
ix. Sangues fetais - A mistura entre o sangue fetal e o maternal pode produzir um
valor falsamente alto de HBG.
2. HCT
i. Aglutinação de hemácias - Pode produzir valores inexatos de HCT e VCM. A
aglutinação de hemácias pode ser detectada através da observação de valores
anormais de HCM e CHCM, como também através do exame da lâmina de
sangue tratado com corante. Nesses casos, os métodos manuais talvez sejam
necessários para obter um valor de HCT exato.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 29 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 29
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
3. RBC - A diluição de células da série vermelha contém todos os elementos formados
no sangue: eritrócitos, leucócitos e plaquetas. Durante a contagem de eritrócitos
(células vermelhas), as plaquetas não são contadas, já que o seu tamanho é inferior
ao limiar mínimo.
i. Leucócitos (células da série branca), por outro lado, são incluídos na contagem
de RBC. Entretanto, considerando que a razão normal entre hemácias e
leucócitos é tão extrema, a influência do WBC no RBC é insignificante;
ii. WBC Altas - Em raros casos, onde a WBC é extremamente alta, a contagem
de RBC pode ser diferente, especialmente se a contagem de RBC for
extremamente baixa;
iii. Hemácias aglutinadas - Pode causar uma contagem de RBC erroneamente
baixa. A presença de valores elevados de HCM e CHCM pode identificar
amostras de sangue que contenham hemácias aglutinadas. Isso é visto através
do exame da lâmina de sangue tratado com corante;
iv. Aglutininas frias - As imunoglobulinas IgM, cujo nível é alto nas doenças de
aglutinação fria, podem causar contagens baixas de RBC e PLT e aumentar o
VCM.
4. HGB
i. Turbidez da amostra de sangue - Diversos fatores fisiológicos e/ou terapêuticos
podem produzir resultados errôneos de HGB alto. Para obter resultados de
hemoglobina exatos quando ocorre aumento de turbidez da amostra de
sangue, determine a causa da turbidez e siga um dos métodos abaixo;
ii. WBC Elevado - Contagem extremamente elevada de WBC causa dispersão
excessiva de luz. Nesse caso, use métodos de referência (manuais). A amostra
diluída deve ser centrifugada e o fluido sobrenadante deve ser medido com
espectrofotômetro;
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 30 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 30
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
iii. Níveis elevados de lipídios - A alta concentração de lipídios na amostra de
sangue dá aparência “leitosa” ao plasma. Isso pode ocorrer em caso de
hiperlipidemia, hiperproteínemia (como nas gamopatias) e hiperbilirrubinemia.
A determinação exata da hemoglobina pode ser obtida através de métodos de
referência (manuais) e de uma amostra de controle de qualidade de plasma.
5. VCM
i. Aglutinação de células sangüíneas vermelhas - Pode produzir valor incorreto
de VCM. A aglutinação de hemácias pode ser detectada através da observação
de valores anormais de HCM e CHCM, como também através do exame da
lâmina de sangue tratado com corante. Nesses casos, os métodos manuais
talvez sejam necessários para obter um valor de VCM exato;
ii. O número excessivo de plaquetas grandes e/ou a presença de contagem de
WBC excessivamente alta pode interferir com a determinação exata do valor de
VCM. Nesses casos o exame cuidadoso da lâmina de sangue tratado com
corante pode revelar o erro.
6. HCM
A HCM é determinada de acordo com o valor da HGB e a contagem de RBC. As
limitações apontadas para HGB e RBC exercem efeito sobre a HCM e podem causar
valores errôneos.
7. CHCM
A CHCM é determinada de acordo com os valores de HGB e HCT. As limitações
apontadas para HGB e RBC exercem efeito sobre a CHCM e podem causar
valores errôneos.
8. RDW
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 31 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 31
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
i. A largura de distribuição de células sanguíneas vermelhas é determinada de
acordo com a contagem de RBC. A diluição de células da série vermelha
contém todos os elementos formados no sangue: eritrócitos, leucócitos e
plaquetas. Durante a contagem de eritrócitos (células vermelhas), as plaquetas
não entram na contagem de RBC, já que o seu tamanho é inferior ao limiar
mínimo. Porém, os leucócitos (células da série branca) são contados e
incluídos na contagem do RBC. Considerando que a proporção normal entre o
RBC e o WBC é tão extrema, a influência do WBC é extremamente baixa e a
contagem de RBC pode precisar de correção, especialmente se a contagem de
RBC for extremamente baixa;
ii. RBC aglutinado - Pode causar contagem de RBC incorretamente baixa e
RDW’s errôneos. A aglutinação de hemácias pode ser detectada através da
observação de valores anormais de HCM e CHCM, como também através do
exame da lâmina de sangue tratado com corante;
iii. Deficiência nutricional ou transfusão de sangue - Podem causar resultados
elevados de RDW devido à deficiência de ferro, vitamina B12 ou folato. Os
resultados de RDW’s elevados também podem estar presentes pela
distribuição de RBC bimodal na transfusão sanguínea.
9. PLT
i. Eritrócitos muito pequenos (micrócitos), fragmentos de eritrócitos
(esquizócitos) e fragmentos de WBC podem interferir na contagem adequada
de plaquetas, provocando resultados elevados.
ii. Eritrócitos aglutinados - Podem capturar plaquetas, causando contagem baixa
e errônea de plaquetas. A presença de eritrócitos aglutinados pode ser
detectada através da observação de valores anormais de HCM e CHCM e do
exame cuidadoso da lâmina de sangue tratado com corante;
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 32 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 32
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
iii. Plaquetas gigantes em números excessivos - Podem causar contagem de
plaquetas erroneamente baixa, já que, se excederem o limiar máximo do
parâmetro correspondente, essas plaquetas grandes talvez não sejam
contadas;
iv. Quimioterapia - As drogas citotóxicas e imunossupressivas podem aumentar
a fragilidade dessas células, o que pode causar contagens baixas de PLT.
Talvez sejam necessários métodos de referência (manuais) para obter uma
contagem de plaquetas exata;
v. Hemólise - Espécimes hemolisados contêm estroma de células vermelhas,
que pode aumentar as contagens de plaquetas;
vi. Sangue com citrato - O sangue anticoagulado com citrato pode conter
plaquetas aglomeradas, causando redução na sua contagem;
vii. Inclusões de RBC - Inclusões de eritrócitos tais como: corpúsculos de Howell-
Jolly, corpúsculos de Heinz, grânulos sideróticos, basofílicos e etc., podem
produzir aumento significativo na contagem de plaquetas;
viii. Aglutinação de plaquetas - Plaquetas acumuladas devido às técnicas de
coleta inadequadas ou satelitoses de plaquetas causadas pela ativação EDTA
das imunoglobulinas podem causar uma contagem reduzida de plaquetas
e/ou contagem elevada de WBC. O espécime deve ser recoletado em
anticoagulante a base de citrato de sódio e re-analisado somente para
plaquetas.
10. VPM
i. As plaquetas gigantes que excederem o limiar máximo do parâmetro
correspondente podem não ser contadas como plaquetas. Consequentemente,
não serão incluídas no cálculo do Volume Plaquetário Médio do equipamento;
ii. Os eritrócitos muito pequenos (micrócitos), fragmentos de eritrócitos
(esquizócitos) e fragmentos de células sangüíneas brancas podem interferir na
contagem e no dimensionamento adequado das plaquetas;
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 33 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 33
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
iii. Eritrócitos aglutinados - Podem capturar plaquetas, causando resultado de
VPM incorreto. A presença de eritrócitos aglutinados pode ser detectada
através da observação de valores anormais de HCM e CHCM e do exame
cuidadoso da lâmina de sangue tratado com corante;
iv. Quimioterapia - Também pode afetar o dimensionamento das PLT’s.
Na rotina do setor de Hematologia do Laboratório de Análises Clínicas do Hospital
Governador Israel Pinheiro, os resultados considerados aprovados ou normais pelos
contadores Yumizen são liberados de modo direto do equipamento para o sistema
laboratorial, por meio de software de interfaceamento sem a revisão microscópica do
profissional do setor, que dará finalização à análise e assinará o laudo. Para os
hemogramas reprovados, a distensão de lâmina e exame microscópico são exigidos.
Os critérios para a confecção e avaliação das distensões de sangue periférico são
muitos e estão especificados no Anexo I e IV deste POP.
No caso de presença de eritroblastos, essas células nucleadas resistem à ação da
solução diluidora para a contagem de leucócitos, sendo portanto, contadas como
leucócitos. Isso acarreta erro, elevando a contagem. Torna-se necessária a correção
do valor obtido a fim de eliminar os eritroblastos, quando constituem número
significativo (acima de 10 eritroblastos em 100 células contadas em lâmina). A
contagem global expressa os valores de leucócitos mais eritroblastos. Na contagem
diferencial são enumerados 100 leucócitos e os eritroblastos que aparecem durante
essa contagem. A fórmula para o cálculo dos eritroblastos em sangue periférico se
encontra no Anexo V.
Resultados considerados críticos, ou seja, aqueles que refletem estado patológico
que pode pôr em risco a vida do paciente a menos que se tomem medidas
apropriadas, são oficializados via telefone ao médico atendente ou ao responsável
pelo paciente. Os valores estabelecidos par tal estão descritos no Anexo II.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 34 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
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Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 34
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Com relação à liberação dos laudos, o setor de Hematologia tem definido uma lista
de mnemônicos (trinca de letras) que tem como objetivo a padronização da liberação
final dos resultados. O Anexo III traz as relações dos mesmos.
ii. Valores de Referência
Idade Hemoglobina Hematócrito Hemácias VCM HCM CHCM
Cordão 17,1 1,8 52,0 5 4,64 0,5 113 6 37 2 33 1
1 dia 19,4 2,1 58,0 7 5,30 0,5 110 6 37 2 33 1
2 – 6 dias 19,8 2,4 66,0 8 5,40 0,7 122 14 37 4 30 3
14 – 23 dias 15,7 1,5 52,0 5 4,92 0,6 106 11 32 3 30 2
24 – 37 dias 14,1 1,9 45,0 7 4,35 0,6 104 11 32 3 31 3
40 - 50 dias 12,8 1,9 42,0 6 4,10 0,5 103 11 31 3 30 2
2 – 25 meses 11,4 1,1 38,0 4 3,75 0,5 101 10 30 3 30 2
3 – 3,5 meses 11,2 0,8 37,0 3 3,88 0,4 95 9 29 3 30 2
5 – 7 meses 11,5 0,7 38,0 3 4,21 0,5 91 9 27 3 30 2
8 – 10 meses 11,7 0,6 39,0 2 4,35 0,4 90 8 27 3 30 1
11 – 13,5 m 11,9 0,6 39,0 2 4,44 0,4 88 7 27 2 30 1
1,5 – 3 anos 11,8 0,5 39,0 2 4,45 0,4 87 7 27 2 30 2
5 anos 12,7 1,0 37,0 3 4,65 0,5 80 4 27 2 34 1
10 anos 13,2 1,2 39,0 3 4,80 0,5 81 6 28 3 34 1
Homens 15,5 1,1 46,0 3,1 5,11 0,38 - - -
Mulheres 13,7 1,0 40,9 3 4,51 0,36 - - -
Homens e Mulheres - - - 90,1 4,8 30,2 1,8 33,7 1,1
JOHNSON, TR. “How growing up can alter lab values in pediatric laboratory medicine”. Diag Med
(special issue) 1982; 5: 13-18. (Média 1 DP)
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 35 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 35
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Idade Global de
Leucócitos
Neutrófilos
Eosinófilos
Basófilos
Linfócitos
Monócitos
Nascimento 18,1
(0,0-30,0)
11,0
(6,0-26,0)
0,40
(0,02-0,85)
0,10
(0-0,64)
5,5
(2,0-11,0)
1,05
(0,40-3,1)
6 meses 11,9
(6,0-17,5)
3,8
(1,0-8,5) 32%
0,30
(0,07-075) 2,5%
0,05
(0-0,20) 0,4%
7,3
(4,0-13,5) 61%
0,58
(0,10-1,3) 4,8%
12 meses 11,4
(6,0-17,5)
3,5
(1,5-8,5) 31%
0,30
(0,05-0,70) 2,6%
0,05
(0-0,20) 0,4%
7,0
(4,0-10,5) 61%
0,55
(0,05-1,1) 4,8%
2 anos 10,6
(6,0-17,0)
3,5
(1,5-8,5) 33%
0,28
(0,04-0,65) 2,6%
0,05
(0-0,20) 0,5%
6,3
(3,0-9,5) 59%
0,53
(0,05-1,0) 5,0%
6 anos 8,5
(5,0-14,5)
4,3
(1,5-8,0) 51%
0,23
(0-0,65) 2,7%
0,05
(0-0,20) 0,6%
3,5
(1,5-7,0) 42%
0,40
(0-0.8) 4,7%
12 anos 8,0
(4,5-13,5)
4,4
(1,8-8,0) 55%
0,20
(0-0,55) 2,5%
0,04
(0-0,20) 0,5%
3,0
(1,2-6,0) 38%
0,35
(0-0,8) 4,4%
16 anos 7,8
(4,5-13,0)
4,4
(1,8-8,0) 57%
0,20
(0-0,50) 2,6%
0,04
(0-0,20) 0,5%
2,8
(1,2-5,2) 35%
0,40
(0-0,8) 5,1%
21 anos 7,4
(4,5-11,0)
4,4
(1,8-7,7) 59%
0,20
(0-0,45) 2,7%
0,04
(0-0,20) 0,5%
2,5
(1,0-4,8) 34%
0,30
(0-0,8) 4,0%
Altman PL e Dittmer DS Blood and other body fluids. Federation of American Societies for Experimental
Biology, 1961.
7.3 Cuidados especiais
Os cuidados habituais de segurança devem ser aplicados na manipulação da amostra e
dos reagentes conforme o pop de segurança do laboratório.
Os reagentes utilizados em condições técnicas adequadas e armazenados nas
condições especificadas são estáveis até a data da validade expressa na etiqueta.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 36 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 36
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
8. Siglas
BASO: basófilo
CEQ: controle externo da qualidade
CIQ: controle interno de qualidade
EDTA: ácido etilenodiamino tetra-acético
HBG: hemoglobina
PLT: plaqueta
POP: procedimento operacional padrão
RBC: glóbulos vermelhos
SNA: solicitação de nova amostra
WBC: glóbulos brancos
9. Indicadores
Desempenho no controle externo da qualidade (CEQ)
Recoleta (geral, por material impróprio, para confirmação, por acidente e diversas)
TAT (Turnaround Time) para testes imediatos e de emergência - HEMATOLOGIA
10. Gerenciamento de riscos
Categoria
de risco
Falhas potenciais
geradoras de riscos Evento Ações de prevenção
Ações frente ao
evento
Assistencial Utilização de amostras
inadequadas
Resultados
incorretos SNA SNA
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 37 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 37
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Assistencial
Reagente inadequado:
Troca de reagente ou
reagente vencido
Resultados
incorretos
Conferir o reagente
antes de iniciar sua
utilização
Utilizar o reagente
adequado e
refazer o exame
Assistencial Manutenção vencida Resultados
incorretos
Executar as
manutenções
preventivas nas datas
previstas.
Refazer o exame
Assistencial Calibração vencida Resultados
incorretos
Manter a calibração do
equipamento em dia. Refazer o exame
11. Referências
Manual do Usuário YUMIZEN H2500 / Yumizen SPS - Hematology System. HORIBA
ABX.
JACOBS, D. S. Laboratory Test Handbook. 3ª ed., Cleveland, Lexi – Comp, 1994.
JOHNSON, TR. “How growing up can alter lab values in pediatric laboratory medicine”.
Diag Med (special issue) 1982; 5: 13-18. (Média 1 DP)
Altman PL e Dittmer DS Blood and other body fluids. Federation of American Societies
for Experimental Biology, 1961.
12. Anexos
Anexo I: Critérios para confecção de lâminas de esfregaço / 1ª Visita ou mudança do
quadro laboratorial
Anexo II: Valores críticos para comunicação com médico
Anexo III: Notas interpretativas do hemograma
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 38 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 38
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Anexo IV: Interpretação de alarmes
Anexo V: Cálculo de eritroblastos em sangue periférico
Anexo VI: Modelo de resultado liberado pelo Yumizen
Anexo VII: Planilha de Registro de Manutenção
Anexo VIII: Planilha Diária de Hematoscopia / Teste de Mistura
Anexo IX: Substituição de Plasma
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 39 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 39
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO I. Critérios para confecção de lâminas de esfregaço / 1ª Visita ou mudança do quadro
laboratorial
Leucocitose > 15.000/mm3
Leucopenia < 2.000 /mm3
“ALARMES” LMNE
(vide Anexo IV – item 5)
GCI, LIA, RU, EL, EN,
DN, DM, NL, MN, NE
“ALARMES” para Linfócitos Atípicos – LIA > 3%
“ALARMES” para GCI
(Grandes Células Imaturas)
> 3%
Monocitose > 20%
Linfopenia < 800 / mm3
Hemoglobina < 8 g%
VCM > 100
VCM < 70
CHCM > 36
RDW > 20
Trombocitopenia
(vide POP LAB HEM - 008)
< 100.000 / mm3
Trombocitose > 1.0000.000 / mm3
Eritrocitose > 6.000.0000/ mm3
Alarmes Técnicos (Vide Anexo IV) LMNE (+/-), BASO (+/-)
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 40 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 40
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO II. Valores críticos
Valores críticos são os que requerem avaliação hematológica, caso o histórico do doente
não seja conhecido ou tenha se alterado bastante em relação aos exames anteriores.
Devem ser aqueles de importância clínica e devem ser verificados pelas pessoas
capacitadas do serviço (bioquímicos e/ou patologistas clínicos do setor).
Níveis críticos do hemograma
Hemoglobina (g%) < 7,0
Neutrófilos (/mm3) < 500
Plaquetas (/mm3) < 50.000
Novo diagnóstico de Leucemia
RNI >5.0
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 41 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 41
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO III. Notas interpretativas do hemograma (Padronização para liberação de laudos).
1. SÉRIE VERMELHA
Mnemônico Nota interpretativa
ACA Presença de acantócitos
ANI Anisocromia
CAA Hemácias com aspecto normal
CAC Anisopoiquilocitose intensa
CAI Anisocitose intensa
CAN Anisocitose
CEL Presença de eliptócitos
CEO Presença de eritroblastos ortocromáticos
CHC Presença de hemácias crenadas
CHM Hipocromia e microcitose
CMT Hemoglobinopatia
COV Presença de ovalócitos
CPD Presença de ovalócitos
CPE Presença de esferócitos
CPH Presença de hemácias em alvo
CPI Polimocrasia
CPO Hemácias com ponteado basófilo
CPS Poiquilocitose
CPV Poiquilocitose intensa
DAC Presença de dacriócitos
DPH Dupla população hemática
EST Presença de estomatócitos
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 42 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 42
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
FRH Fenômeno de Roulaeux Hemático
HFA Presença de Hemácias Falciformes
HIP Hipocromia
HNO Hemácias normocíticas e normocrômicas
MAC Macrocitose
MEC Presença de Macroesferócitos
MOC Microcitose
PBC Presença de Baskett Cells
PFH Presença de fragmentação hemática
PMG Presença de manchas de Gumprecht
PMI Presença de microesferócitos
TER Presença de eritroblastos (*vide Nota)
2. PLAQUETAS
Mnemônico Nota interpretativa
APL Aglutinação plaquetária
CSS Plaquetas aparentemente diminuídas
PLN Plaquetas aparentemente em número normal
PMA Presença de macroplaquetas
PSE Pseudotrombocitopenia
SCC Sugerimos nova amostra em citrato
TPM Trombocitopenia
TRO Trombocitose
PGP Presença de grumos plaquetários
3. SÉRIE BRANCA
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 43 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 43
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Mnemônico Nota interpretativa
ALI Avaliar doença linfoproliferativa crônica
AMI Avaliar doença mieloproliferativa crônica
BAS Basofilia
CAS Aspecto sugestivo de LLC
CDH Corpúsculos de Dohle
CGT Granulações tóxicas nos neutrófilos
CIA Leucemia aguda, provavelmente linfoblástica
CIB Leucemia aguda, provavelmente mieloblástica
CLN Leucócitos de aspecto normal
CLR Presença de linfócitos reativos
CSC Aspecto sugestivo de LMC
DBA Desvio à esquerda até bastonetes
DBL Desvio à esquerda até blastos
DIM Presença de imunócitos
DME Desvio à esquerda até metamielócitos
DMI Desvio à esquerda até mielócitos
DPR Desvio à esquerda até promielócitos
EOS Eosinofilia
LCO Leucocitose
LEU Leucopenia
LFO Linfopenia
LIN Linfocitose
LMA Linfocitose à custa de linfócitos predominantemente maduros
MON Monocitose
NEN Neutropenia
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 44 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 44
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
NEU Neutrofilia
PAN Pancitopenia
PHU Pelger Huet
PLA Presença de plasmócitos
PNH Presença de neutrófilos hipersegmentados
PPL Presença de precursores linfáticos
PPR Presença de prolinfócitos
RLU Reação leucoeritroblástica
VCI Vacuolização citoplasmática
CSR Sugerimos repetir a critério clínico
CVC Resultado verificado e confirmado
MNE Solicitamos nova amostra por motivo técnico
SAH Sugerimos avaliação hematológica
LPA Lâmina para avaliação
4. QUANTIFICAÇÃO DE BASTONETES
Mnemônico Nota interpretativa
BAZ BASTONETES 0%
BAU BASTONETES 1%
BAD BASTONETES 2%
BAT BASTONETES 3%
BAQ BASTONETES 4%
BAC BASTONETES 5%
B06 BASTONETES 6%
B07 BASTONETES 7%
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 45 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 45
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
BAO BASTONETES 8%
BAN BASTONETES 9%
BADE BASTONETES 10%
B11 BASTONETES 11%
B12 BASTONETES 12%
B13 BASTONETES 13%
B14 BASTONETES 14%
B15 BASTONETES 15%
B16 BASTONETES 16%
B17 BASTONETES 17%
B18 BASTONETES 18%
B19 BASTONETES 19%
B20 BASTONETES 20%
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 46 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 46
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO IV. Interpretação de alarmes
1. Sinalizadores gerais:
i. Parâmetro associado a *: As contagens em um parâmetro diferem mais do que os
limites aceitáveis. O resultado não é confiável;
ii. !: Sinalizador suspeito, o resultado deve ser mais investigado;
iii. --- : Resultado inválido;
iv. Plaqueta concentrada: Indica a ativação do modo de linearidade estendida de PLT
para uma HGB < 2 g/dl;
v. H: Indica que o resultado está acima do limite de pânico definido pelo usuário;
vi. L: Indica que o resultado está abaixo do limite de pânico definido pelo usuário;
vii. D: Se pelo menos um parâmetro estiver fora das faixas de linearidade. Indica que a
amostra deverá ser diluída.
2. Alarmes para eritrócitos:
i. MICROCITOSE: Quando o VCM está abaixo dos limites especificados pelo usuário;
ii. MACROCITOSE: Quando o VCM está acima dos limites especificados pelo usuário;
iii. MIC+, MIC++, MIC+++: Representam os três níveis de gravidade em relação à
porcentagem de hemácias microcíticas quantificadas abaixo do limiar representado
à esquerda da curva de RBC (os níveis podem ser configurados pelo usuário);
iv. MAC+, MAC++, MAC+++: Representam os três níveis de gravidade em relação à
porcentagem de hemácias macrocíticas quantificadas acima do limiar representado
à direita da curva de RBC (os níveis podem ser configurados pelo usuário);
v. HIPOCROMIA+, ++, +++: Representam três níveis de gravidade em relação a um
valor baixo de CHCM (os níveis podem ser configurados pelo usuário);
vi. ANISOCITOSE+, ++, +++: Representam três níveis de gravidade em relação a um
valor alto de RDW (os níveis podem ser configurados pelo usuário).
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 47 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 47
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
OBS.: Os limiares RBC1 e RBC2 definem as áreas microcíticas e macrocíticas
3. Alarmes para plaquetas
Os sinalizadores PLT são gerados sob as seguintes condições:
O histograma PLT muda de acordo com as RBCs microcíticas presentes na área da análise de plaquetas.
Uma presença excessiva de partículas no lado direito gera o sinalizador MIC (micrócitos), que é mostrado na área de alarme de plaquetas. Ele indica a presença de micrócitos na área de contagem das plaquetas. Se associado com uma rejeição PLT (*), os resultados de PLT não são confiáveis.
Se o limiar móvel não puder ser identificado (nenhuma depressão entre histogramas PLT e RBC), o sinalizador ESQ (Esquizócitos) aparecerá.
Anormalidades suspeitas Presença de Esquizócitos Presença de agregados plaquetários. Verifique esta anormalidade, observando o esfregaço de sangue periférico para confirmar seus resultados
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 48 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 48
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
4. Alarmes para DIF (Matriz Dupla):
OBS.: As iniciais a seguir, nos alarmes de DIF (Matriz Dupla), deverão ser lidas como
se segue:
LIC GCI
ALY LIA
NO RU
LL EL
LN EN
RN DN
RM DM
NL NL
MN MN
NE NE
i. Alarmes Patológicos: Os valores de h (alto), H (extremamente alto), l (baixo) e L
(extremamente baixo) podem ser configurados pelo usuário. Alarmes patológicos
podem ser disparados como valores normais ou extremos (depende da instalação
do software).
a. Alarmes de WBC Leucocitose Leucopenia Linfocitose Linfopenia
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 49 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 49
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Neutrofilia Neutropenia Eosinofilia Mielemia
Células grandes imaturas Linfócitos atípicos Desvio à esquerda
Eritroblastos Monocitose
Basofilia Pancitopenia
Blastos
b. Alarmes de RBC Eritrocitose
Aglutininas frias Anemia
Macrocitose Microcitose Anisocitose Hipocromia
Poiquilocitose
c. Alarmes de PLT
Trombocitose Trombocitopenia
Cistócitos Células Pequenas
Agregados Plaquetários Macroplaquetas
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 50 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 50
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ii. Alarmes Técnicos de CBC
a. Rejeição na WBC "(*)": Rejeição na WBC ocorre quando existe diferença
significativa entre as diferentes contagens de WBC1 e WBC2 (Diferença superior
ao limite máximo (10%) e nenhuma das 2 contagens (WBC1 ou WBC2) é
equivalente à contagem de BASO. Rejeição na WBC também gera rejeições em
todos os parâmetros da matriz (porcentagem e valor absoluto); e nos parâmetros
LIC e ALY;
b. Rejeição na RBC «(*)»: Rejeição de RBC produz rejeição em VCM, HCM,
CHCM, RDW e RBC;
c. Rejeição em PLT «(*)»: Rejeição de RBC produz rejeição em PDW, VCM, PCT e
PLT;
d. Rejeição no HCT "(*)": Rejeição no HCT indica que as contagens de HCT
duplicadas (HCT1 e HCT2) apresentam diferença significativa e esta excede o
limite máximo (5%). Isto influencia o resultado da CHCM, que também é
rejeitado;
e. Rejeição na HGB "(*)": Rejeição na HGB indica que o valor da referência
"branca" está acima do limite aceitável. A rejeição também se faz presente nos
parâmetros associados de HCM e CHCM.
iii. Alarmes técnicos da matriz dupla
a. Rejeição na MATRIZ DUPLA "(*)"
Rejeição no LMNE indica fraca correlação entre as medições resistiva e
óptica na célula de fluxo. Esta rejeição (*) está presente para todos os
parâmetros de LMNE (porcentagem e valor absoluto).
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 51 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 51
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
b. Alarme em MONO/BASO
Alarme em MONO / BASO (alarme MB) indica que a porcentagem de
basófilos no canal de basófilos é maior do que a porcentagem de
Linf/Neut/Mono em dados brutos encontrados no canal da matriz.
OBS.: Possíveis causadores:
Pequenos basófilos na caixa ALY;
Blastos;
Contaminação no canal de basófilos;
Causadores (!) em todos os parâmetros % e # da matriz. O MONO e
BASO em # são substituídos por: «--. --»
5. Amostragem incorreta: Este alarme aparece em todos os parâmetros (sem resultado "--.
--") em caso de amostragem incorreta ou entupimento da válvula de amostragem.
Durante operação em modo automático, a análise será interrompida depois que um
número de amostras definido pelo usuário acusar erros de amostragem. Alarmes de
amostragem incorreta são mostrados na tela e na impressão dos resultados.
i. Equilíbrio WBC - LMNE – BASO
ii. Alarme WBC BASO: Este alarme associado a L1, Ll e Ll1 indica diferença entre o
resultado de WBC e o do canal BASO. Isto faz disparar um alarme (!) no resultado
de WBC (Resultado do canal BASO).
iii. Alarme LMNE (Insuficiência de células representadas na matriz): Este alarme indica
correlação deficiente entre o canal WBC e o LMNE em termos de contagens totais.
O resultado de WBC apresentado é aquele gerado pelo canal WBC. Este alarme
pode significar um erro de detecção na célula de fluxo do LMNE.
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 52 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 52
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
iv. Alarme BASO (Insuficiência de células representadas no canal BASO): Este alarme
indica correlação deficiente entre o canal WBC e o BASO em termos de contagens
totais. O resultado de WBC apresentado é aquele gerado pelo canal WBC. Este
alarme pode significar erro de detecção no canal BASO.
v. Alarme LMNE+ (Excesso de células representadas na matriz): Este alarme indica
um desequilíbrio positivo (excesso de células) entre os canais WBC e LMNE.O
resultado de WBC apresentado é aquele gerado pelo canal WBC.
vi. Alarme BASO+ (Excesso de c lulas representadas na matriz): Este alarme indica
desequilíbrio positivo (excesso de células) entre os canais WBC e BASO. O
resultado de WBC apresentado é aquele gerado pelo canal WBC.
ANEXO V. Cálculo de eritroblastos em sangue periférico
Contagem corrigida = Contagem não corrigida x 100
100 + Eritroblastos encontrados
Ex: Global do Equipamento = 74.000
Nº Eritroblastos = 350
74.000 x 100 Cels. / 350 + 100
7.400.0 450 = 16.444 = Global corrigida
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 12/08/2020 53 de 56 Emissão
inicial Maria Esther C. Meira
Paula M. F. Anjos Solange Pacheco Ricardo Lacerda
Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 53
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO VI. Modelo de resultado liberado pelo Yumizen:
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 10/11/2018 63 Emissão inicial Solange Pacheco
Maria Esther Meira Ana Marina Campas de Faria
01 19/01/2021 56 Revisão Solange Pacheco/ Paula M. F. Anjos
Maria Esther Meira Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 54
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO VII. Planilha de Registro de Manutenção
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 10/11/2018 63 Emissão inicial Solange Pacheco
Maria Esther Meira Ana Marina Campas de Faria
01 19/01/2021 56 Revisão Solange Pacheco/ Paula M. F. Anjos
Maria Esther Meira Ana Marina Campas de Faria
ASSINATURA E CARIMBO 55
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
Anexo VIII: Planilha Diária de Hematoscopia / Teste de Mistura
PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO
POP LAB HEM - 026
I - CONTROLE HISTÓRICO
REVISÃO DATA Nº
PÁGINAS HISTÓRICO
ALTERAÇÃO ELABORAÇÃO VERIFICAÇÃO APROVAÇÃO
00 10/11/2018 63 Emissão
inicial
Solange Pacheco
Maria Esther Meira Ana Marina Campas de
Faria
01 19/01/2021 56 Revisão Solange Pacheco/ Paula M. F. Anjos
Maria Esther Meira Ana Marina Campas de
Faria
ASSINATURA E CARIMBO 56
TÍTULO: PASSO A PASSO NO EQUIPAMENTO YUMIZEN H2500
ANEXO IX. Substituição de Plasma
A substituição de plasma deverá ser realizada quando a distribuição de células estiver alterada,
como mostrado na figura A abaixo. Normalmente isso ocorre quando os valores de bilirrubina
estão aumentados.
Para realizar a substituição de plasma:
Centrifugar a amostra ou parte dela por 5 minutos a 4000rpm;
Retirar o plasma e colocar o volume equivalente de Diluent 2 (ex.: se retirar 1,5mL de
plasma, colocar 1,5mL de Diluent 2);
Homogeneizar bem;
Fazer nova leitura do Yumizen.
O novo resultado será como mostrado na figura B. Os novos valores serão corrigidos a critério
clínico pelo PNS responsável diretamente no MV.