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TRADUCCION - Biosíntesis de Proteínas
- 1950s
Proteínas: arreglos de solo 20 aa en forma no azarosa
- Ribosomas: lugar de síntesis de proteínas
- 1960s polisomas, tRNAs
- 1961 Jacob y Monod
Teoría del mensajero
-1964s confirmación de mRNA intermediario informacional
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mRNA
tRNA
Aminoacil-tRNA sintetasa
Ribosomas
Factores proteicos
Componentes principales sistema traducción
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- Secuencia codificante
- 5' leader No traducible (5´UTR)
- 3' trailer No traducible (3´UTR)
- 5' cap and 3' poly (A) tail (eucariotas)
mRNA :
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tRNA
Y T
TyC arm D arm
L-shaped
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Aminoacil-tRNA sintetasas
• Une los aa al correcto tRNA
• 20 enzimas diferentes
• Requiere ATP
Reconocimiento del tRNA:
puntos de contacto entre tRNA ysitio activo de proteína (1–5 sitios,muchas veces incluye anticodon)
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tRNA
Une un aa específico en la terminación 3´
tRNAs isoaceptores con anticodones diferentes unen el mismo aa(varios codones para un aa)
Hay varias especies de tRNA que pueden reaccionar con el mismocodon
El anticodon hace apareamiento de bases con un codon de mRNA (omas), la tercer base de codon con la primer base de anticodon puedeaparear con otras bases además del apareamiento tradicional(Wobbling)
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60S subunit
40S subunit
Ribosomas
4 sitios de binding
mRNA-binding site
A site (aminoacyl)
P site (peptidyl)
E site (exit)
Procariotas :
subunidades 30s y 50s
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Traducción
3 fases
•Iniciación
•Elongación
•Terminación
y Reciclado
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INICIACION
Procariotas Eucariotas
Tienen en común
-Disociación de ribosomas en subunidades
-Formación complejo preiniciación en subunidad menor
-Unión de complejo preiniciación a mRNA
-Iniciación mediada por factores
-Tanscripción- traducción acopladas -Iniciación citoplasmática
Iniciación en mRNAs que se
están transcribiendo
-Reconocimiento de sitio de iniciación - Estrategias diferentes para por interacción mRNA-RNAr reconocimiento de sitio de (Secuencia Shine-Dalgarno) iniciación
5´-UAAGGAGGU-3´ Traducción Cap-dependiente
“scanning”
Traducción Cap-independiente (IREs)
-3 Factores de iniciación (IF1,IF2,IF3) - 13 factores diferentes
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Mecanismos de iniciación
Iniciación cap dependiente y cap independiente
cap-dependiente (Kozak, M 1978)
- Reconocimiento m7G-cap en extremo 5´
- Unión de subunidad 40s
- scanning hasta AUG iniciador
*Leaky scanning
*Ribosoma Shunting
*Reiniciación
cap-independiente (1988-Picornavirus)
Unión directa de subunidad ribosomal 40s en sitio interno sobre mRNA denominado IRES
INICIACION
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INICIACION cap dependiente
3 Pasos
1) Formación del complejo de preiniciación 43 S
Unión del iniciador tRNAiMet a la subunidad menor
2) Unión de complejo 43 S a mRNA
3) Localización codón de iniciación (scanning)
4) Unión de la subunidad mayor del ribosoma
Cada uno de los pasos de la iniciación de la traducción es facilitado
por por proteínas denominadas Factores de iniciación.
EUCARIOTAS
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Iniciación
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Iniciación
eIF4F eIF4E
eIF4G
eIF4A
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Interacción entre factores y regulación de iniciación
Interacción entre cap y poli A
Sinergismo que estimula inicio de traducción-circularización de mRNA
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Reconstitution of the eIF4E/GST-4G1f/Pab1p Complex(A) Reconstitution with Pab1p immobilized on poly(A)-Sepharose resin. Pab1p bound to poly(A)-Sepharose resin was incubated with the indicated GST-4G1f proteins and eIF4E. Bound proteins were eluted with buffer containing SDS, resolved by SDS–PAGE, and visualized by Western analysis with the appropriate antibodies.(B) Reconstitution with eIF4E immobilized on the cap-analog resin 7mGDP-agarose. eIF4E bound to the resin was incubated with the indicted GST-4G1f proteins and Pab1p/poly(A)125 complexes. Bound proteins were analyzed as in (A).
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If the dsRNA is incubated with GST-4G1f-459, Pab1p, and eIF4E (D), most of thedsRNA is linear although some circles are observed (lower left corner). In thepresence of GST-4G1f, Pab1p, and eIF4E (E and F), much of the dsRNA is in acircular conformation with a protein complex positioned where the ends of the RNAmeet. Differences in the apparent width of the RNA result from variation in the tipand imaging force used to generate each image
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Ribosome-recycling
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CODON INICIACION
- AUG codon iniciación predominante en eucariotas y exclusivo en levaduras
AUG mas próximo a 5 ´es iniciación en mayoría de mRNAs
- Secuencia que rodea el AUG es critica :
Pu X X A U G Pu C C Pu C C A U G G
-3 +1 +4 -3 +1 +4
Presencia de estructura 2ª downstream AUG aumenta iniciación a partir de ese sitio
- Factores eIF1, eIF5 ,eIF2 importantes en reconocimiento de AUG
- Estructura secundaria del 5´leader mRNA (puede impedir unión y/o scanning de los ribosomas)
Scanning
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Esquema del fundamento del método de toeprinting
Estrella: primer de oligonucleótidos marcado radiactivamente. Flecha entera: RNAm.Flecha punteada: extendido por la transcriptasa reversa.
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INICIACION
Mecanismos no clásicos de Iniciación
-Leaky scanning :
AUG en contexto débil , carente de Pu en –3 y G en +4
2 proteínas diferentes == N-terminal
== secuencias enteras
-Reiniciación:
Comienza y termina la traducción a partir de un uORF. La subunidad 40s queda unida al mRNA se recarga de factores y comienza la traducción en el siguiente AUG.
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Leaky scanning
AUG
CUG, GUG, UUG codones de iniciación raros
Codones = a AUG son usados como sitios iniciación suplementarios
CUG upstream es usado a veces, 1er AUG siempre
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The autoradiograms show [35S]Met-labeled proteins synthesized in vitrofrom capped mRNAs that encodechloramphenicol acetyltransferase.(A) Initiation at AUG#1 generates anN-terminally extended protein,labeled preCAT. A suboptimal contextaround AUG#1 allows some ribosomesto scan past that site and initiateinstead at AUG#2. This leakyscanning produces a shorter protein,labeled CAT. (B) All mRNAs have asuboptimal context (U in position −3)around the first AUG codon and,except for the control in lane 1, amoderately stable base-pairedstructure between the first andsecond AUGs. The only variable is thedistance (n) between AUG#1 and thebase of the hairpin structure. Whenproperly positioned, the downstreambase-paired structure apparentlysuppresses leaky scanning (lane 4). Afull description of these constructsand the adjustments required for therabbit
D F
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Reiniciación
AUGAUG
uORF
uORF: ORF presente en región 5´UTR
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Factor de transcripción
C/EBP
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cap-independiente
IRES
Internal ribosoma entry sites
IRES : Zonas con estructuras complejas (5´UTRs)Poca similitud en cuanto a secuencia y tamaño. Suactividad depende de integridad estructural.
Se definen funcionalmente
Inicialmente se descubrieron en Virus
3-5% mRNAs celulares se traducen por mecanismo cap-independiente
IRES presentes en 5´UTR
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GCMV IRES
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RNA secondary structure model of the FGF-2, 5´-ATR
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Ensayo plásmido bicistrónico
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FIG. 2. The BCL-2 5-UTR functions as an IRES in vitro. The DNA constructsdepicted (panel A) were transcribed in vitro in the presence of the m7G cap analog, then
translated in nucleased RRL, and resolved via SDS-PAGE and autoradiography.
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Regulación de iniciación de traducción
Niveles de regulación:
1) Estructura de mRNA:
- Accesibilidad de cap- uORFs y ORF dentro de secuencia codificante- Contexto de AUG- Estructura secundaria de mRNA
2) Actividad y Fosforilación de factores de iniciación
3) Interacciones Proteína-RNA
4) Interacciones RNA-mRNA
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Regulación de unión de subunidad 40S al mRNA
a) Proteínas 4E-BPs:
NO Fosforiladas ………..interacción con eIF4E .................. Traducción
Fosforiladas………… no interacción con eIF4E…………. Traducción
PI3-K, Akt y FRAP/mTOR (quinasas involucradas en fosforilación)
b) Disponibilidad de eIF4E y fosforilación
eIF4E poco abundante y limitante.
Fosforilación en Ser209 ...................................... Traducción
Fosforilación de eIF4E en Ser 209 inhibe unión a cap si ocurre previo a interacción cap-eIF4E y estimula si ocurre después de interacción cap-eIF4E. MNK1 (quinasa)
Actividad y Fosforilación de factores de iniciación
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c) eIF4G: Clivaje y disponibilidadEn apotosis o infecciones virales por proteasas .............. Traducción
b) eIF2 fosforilación
eIF2-P (Ser51) Mayor afinidad por GDP ……………………. Traducción
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Proteínas 4E-BPs
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eIF4E fosforilación
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FIG. 1. Shutoff of host protein synthesis and cleavage of eIF4GI and eIF4GII upon poliovirus infection. (A) Pattern of protein synthesis. HeLa cells were mock-infected or infected with poliovirus (100 pfu per cell), and labeled for 30 min with [35S]methionine at the indicated times after infection, and equal amounts of cytoplasmic protein extracts (5 mg) were subjected to SDSy15% PAGE. The arrows indicate viral capsid proteins.(B and C) Analysis of eIF4GI and eIF4GII cleavage. Proteins (40 mg) of samples as in A were resolved by SDSy6% PAGE, transferred to nitrocellulose paper, and incubated with a polyclonal antibody against the N-terminal fragment of eIF4GI (B) or eIF4GII (C)
eIF4G: Clivaje y disponibilidad
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Regulación traduccional durante el estrés celular
Disponibilidad del
complejo ternario
eIF2-P (Ser51)
Mayor afinidad por GDP
Inhibe traducción
general
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[aa] GCN2 kinasa eIF2a P GCN4
traducción general
Regulación de traducción de GCN4
GCN4 : activador transcripcional (biosíntesis de aa) en levaduras
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45Reiniciación
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Interacciones Proteína-RNA
Regulación expresión genes involucrados en metabolismo de hierro
(ALA, TfR, mitocondril aconitase;etc)
Proteínas (IRP) que se unen a IRE: iron responsive elements (hairpin) en 5´o 3´UTR
Evita degradación
Inhibe interacción 4G-3F
Inhibe interacción 4G-3F
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ELONGACION
aa-tRNA:EF1A:GTP
EF1A:GDPEF1B
EF2:GTP
EF2:GDP
eEF1A y eEF1B
Fosfoproteínas
(CK2 yPKC)
eEF2
Fosfoproteína
(eEF2 quinasa
Inhibe actividad)
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TERMINACION
AAAAAAAAAAA Poli(A)
eIF4G
PABPRF3RF1
5`-cap
Complejo de
iniciaciónmRNA
Complejo de
terminación
RF1
RF3-GTP
RF3-GDP RF1
La estructura de RF1 se asemeja a la del tRNA
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Silenciamiento génico
post-transcripcional por
siRNA o miRNA