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UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA –UNADEscuela de Ciencias Agrícolas, Pecuarias y del Medio Ambiente-ECAPMA
Programas: Zootecnia; Agronomía; Ingeniería Agroforestal
LABORATORIOS DE BIOQUÍMICA METABÓLICA-LBMProf: Jairo Granados., MSc
1
PRÁCTICA 1
Determinación de Actividad Ureásica (AU) en suelos, pastos yForrajes
INTEGRANTES DEL GRUPO
ROSAURA ANDREA RENGIFOCODIGO: 1.062.284.022
CORREO: ROANREGU@HOTMAIL.COM
DIRECTOR DE CURSO
JAIRO GRANADOS MORENO
CEAD: SANTANDER DE QUILICHAO
PROGRAMA: ZOTECNIA
FECHA: ____________
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2
RESUMEN
La ureasa es una exoenzima que cataliza la reacción de hidrólisis de la urea, elprincipal producto celular nitrogenado de la degradación de las proteínas y losácidos nucleicos, el cual es más fácil de eliminar que otras formas de nitrógeno(como el amoniaco) porque es soluble en agua y menos tóxico (Science in School,2008). En dicha reacción, la urea se rompe para formar dióxido de técnicas para elanálisis de actividad enzimática en suelos carbono y amonio.
Para medir La Actividad Ureásica, inicialmente debemos saber que la ureasa esuna enzima, la cual es una molécula de naturaleza proteínica producidas por losseres vivos y que se encargan de acelerar reacciones químicas o hacer posiblesaquellas reacciones que de otra manera no se producirían. Es decir soncatalizadores biológicos que al reducir la energía de activación necesaria para lasreacciones transforman las sustancias involucradas en el metabolismo celular.Teniendo en cuenta lo anterior expuesto se hará la descripción de laDeterminación de Actividad Ureásica (AU) y se realizara un análisis de conceptoso términos relacionados con el tema.
PALABRAS CLAVES: Ureasa, reacción, enzimas, hidrólisis, reactivos.
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3
INTRODUCCIÓN
La ureasa es una enzima amidohidrolosa, cataliza la hidrólisis de la urea
produciendo gas carbónico, hidróxido de amonio, los principales inhibidores son
los metales pesados como la plata (Ag+1) el mercurio (Hg+2) también el ácido
hidroxámico y la tiourea
La enzima ureasa, hidroliza la urea produciendo amonio que contiene NNP y CO2.
A través de esta se puede tomar una muestra de la actividad ureásica (AU), a
través de este método se puede analizar el Nitrógeno No Proteico tanto en suelo,
pastos, sangre, orina y otros elementos de origen biológico.
Desde el punto de vista práctico, los conceptos bioquímicos son claves para uncorrecto análisis, interpretación y mejor comprensión de las trasformacionessufridas por los nutrientes como resultado de agentes físicos, químicos ybiológicos. Estos puntos justifican de por si la necesidad de disponer de un bagajebioquímico mínimo.
A través del presente aporte al trabajo colaborativo se hace descripción de laDeterminación de actividad Ureásica (AU) y se hizo un análisis de conceptos otérminos relacionados con el tema. Partiendo de la actividad de laboratorio.
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1.2 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con actividadenzimática y mostrados en los siguientes link:
http://www.youtube.com/watch?v=CpYWD7AQEjc http://www.youtube.com/watch?v=GTTgS-xf7XI http://www.youtube.com/watch?v=UZI15VqFAq8
Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.
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1.3 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE Heurístico relacionado conel artículo científico anexo, denominado: Actividades Enzimáticas en ConsorciosBacterianos de Suelos Bajo Cultivo de Papa con Manejo Convencional y BajoPastizal.
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2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS(completar el cuadro)
Cuadro 1. Lista de materiales y equipos utilizados en la práctica
3 CONCEPTOS
1. ¿Se cumplió la Ley de Michaellis
en este experimento? Porqué?
2. ¿Cuál es el valor de la cons-
tante de Michaellis, la velo-
cidad Máxima y el coeficien-
te de correlación ( r ), de la
cinética estudiada?
3 ¿Cual es la ecuación
de Michaellis de este
experimento?
Caracterización enzimáticade una fosfatasa, que actúa
sobre el glicero-fosfato.
DIMENSIÓN METODOLOGICA
1. ACONTECIMIENTO
Interacción
2. PREGUNTA CENTRALDIMENSIÓN CONCEPTUAL
TCA y colisiones5 TEORIAS
4. PRINCIPIOS
Describen el comportamiento ciné-
ticomolecular de la enzima fosfatasa
sobre los enlaces qcos del
glicerofosfato (sustrato).
Michaellis-MentenEstablece relación entre V de reacción
y la Concentración del sustrato.
10. CONCLUSIÓNLa cinética de la fosfatasa cumplió la Ley
de M-M, debido a la alta correlación lineal
entre los recíprocos de [s | y la V.
8.TABLA de RESULTADOS7. GRAFICAS
VARIABLE VALORKm 0.0103 M
V máx 1.012 umol/min
r 0.999
V = 1.012 [S|/0.0103 + [S|
1/V3.03
200 1/[S|
V
[S|
0.5
0.01
8.TABLA de RESULTADOS7. GRAFICAS
VARIABLE VALORKm 0.0103 M
V máx 1.012 umol/min
r 0.999
V = 1.012 [S|/0.0103 + [S|
1/V3.03
200 1/[S|
V
[S|
0.5
0.01
6. REGISTRO DE DATOS
0.100 0.910
0.050 0.830
0.020 0.670
0.010 0.5000.005 0.330
[S| (mol/lt) V (umol/min)
pH = 7.0T = 37 º
6. REGISTRO DE DATOS
0.100 0.910
0.050 0.830
0.020 0.670
0.010 0.5000.005 0.330
[S| (mol/lt) V (umol/min)
pH = 7.0T = 37 º
7. TRANSFORMACION DE DATOS (Cálculos)
1/[S| 1/V
10 1.0920 1.2050 1.49100 2.00200 3.03
Hallar: 1/[S| y 1/V (doble recíprocaPor Regresión lineal se obtieneb = 0.9873 min/umol; m= 0.0102; R = 0.999
Se calcula KM y V max; así K M = m / b = 0.0102/0.9873 = 0.0103V max = 1 / b = 1 / 0.9873 = 1.012 umol/min
7. TRANSFORMACION DE DATOS (Cálculos)
1/[S| 1/V
10 1.0920 1.2050 1.49100 2.00200 3.03
Hallar: 1/[S| y 1/V (doble recíprocaPor Regresión lineal se obtieneb = 0.9873 min/umol; m= 0.0102; R = 0.999
Se calcula KM y V max; así K M = m / b = 0.0102/0.9873 = 0.0103V max = 1 / b = 1 / 0.9873 = 1.012 umol/min
ENZIMA FOSFATASA
V max [S|V = --------------
K M + [S|
cumple
CINETICA MICHAELLIANA
Actúasobre el
GLICEROFOSFATO
produce
GLICEROL H3PO4
V [ s |
relaciona
V
[S|
Puedeser es
Dondeaparece
así
V max K M
1 / b m / b
es es
ENZIMA FOSFATASA
V max [S|V = --------------
K M + [S|
cumple
CINETICA MICHAELLIANA
Actúasobre el
GLICEROFOSFATO
produce
GLICEROL H3PO4
V [ s |
relaciona
V
[S|
Puedeser es
Dondeaparece
así
V max K M
1 / b m / b
es es
9. INTERPRETACION y DISCUSION:La Km equivale a una concent. De 0.0103 mol de
glicerofosfato por cada litro de solución.
La gráfica de la doble recíproca presentó unacorrelación lineal altamente significativa (p<0.01).
Material o Equipo (Descripción, marca,capacidad, precisión)
Aplicación Fotografía, obtenida en lapráctica
Probeta graduada de100mL; 0,1mL
Volumetría
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Balanza analíticaOHAUS; 210; 0,0001g
Pesada(Gravimetría)
Montaje de titulación Volumen de HCl
gastados cambio decolor
Tubos de ensayo congradilla
Ensayos químicos conmuestras y reactivos
ErlenmeyerAnálisis cuantitativo
en titulaciones
Beakers 400ml
calentar sustancias,traspasar líquidos
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Bureta 25 ml Volumetría
Reactivos Reacciones químicas
Vaso de Precipitadocalentar sustanciastransportar líquidos
Centrifuga
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10
Matraz aforado de100mL
para prepararsoluciones, cajas de 2o 6 unidades
Soporte universalpieza para coger laspinzas de laboratorio
Pipetas de 10mL-5mL
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2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS
Cuadro 2. Reactivos utilizados en la práctica
REACTIVO(NOMBRE) FÓRMULA MOLECULAR CONCENTRACIÓN
Urea H2N-CO-NH2 0,25M
Ureasa 480.KD pH=7.0 0,1%
Cloruro de sodio NaCl 10mL al 1%
cido clorhídrico HCl 0,1N
Cloruro de mercurio HgCl2 1%
Buffer fosfato------------- (20°C) pH 7
Indicador de Tashiro C15H14N3O2Na +
C16H18N3SCl – 3H2O+C2H
---------------
2.3 PROCEDIMIENTOS
2.3.1 Protocolos de muestras analizadas
Concentrado: comercial para ganado
Suelo
: recolectado en la hacienda san juanito en el corregimiento de Sonso en elValle, Temperatura promedio 24°C y altura de 1000 msnm.
FORRAJE: pasto estrella (Cynodon plectostachyus) hacienda san Juanito potrero
5 en el corregimiento de Sonso en el Valle, Utilizado para alimentación bovina
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2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados.
PROCESO DE TITULACION
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Fotos
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3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 TABLAS DE DATOS
Tubos Tipo de Muestras mL Hcl0.1N
Tiempo (s)
B Urea+ Búfer Fosfato+Hgcl2 6.5 20
St Urea + Búfer Fosfato Ureasa al 05%
10 20
1 Urea + Búfer Fosfato EHAU (mL) 6 202 Urea + Búfer Fosfato ESAU (mL) 6 203 Urea + Bufer Fosfato + EFAU (mL) 6,5 20
4 Urea + Bufer Fosfato + ESAU (mL) 5,5 20
3.2. Cálculos
a) 3.2.1 Actividad Ureásica en el tubo estándar
AU=10ml – 6.5ml *0.1*1000umol *240min
Au= 17.5 umol/min
b) Actividad Ureásica del concentrado
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * fd40 min
Fd= 10ml/5ml*10ml/7ml*100gr/1gr=
Fd= 284
6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 28440 min
Au= 355 umol/min
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c) Actividad Ureásica en el suelo (tubo 2)
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * fd40 min
Fd= 10ml/5ml*10ml/5ml*100gr/1grFd=400
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 400
40 min Au= 500 umol/min
d) Actividad Ureásica del forraje
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * fd40 min
Fd= 10ml/5ml*10ml/3ml*100gr/1gr
Fd= 666
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 66640 min
Au=1665umol/min
e) Actividad Ureásica en el suelo (tubo 4)
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * fd40 min
Fd= 10ml/5ml*10ml/5ml*100gr/1gr
Fd=400
AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 400
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17
40 min
Au=1000umol/min
3.3TABLA DE RESULTADOS
Tabla 2. Actividad Ureásica de las muestras biológicas
TUBO TIPO DE MUESTRA AU(
1 Estándar 17,5
2 Suelo 500
3 Forraje 1665
3.3.1 GRÁFICAS
AU
0
500
1000
1500
2000
estandarsuelo
forraje
AU
AU
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18
3.4 DISCUSIÓN DE RESULTADOS
Producir la hidrólisis de la urea por medio de la enzima amidohidrolosa
denominada ureasa.
Cuantificar la actividad ureásica (AU) en muestras de origen biológico,
mediante la técnica volumétrica de Berthelot.
Se obtiene en la solución final un color azul verdoso que indicaría Prueba
Positiva para la actividad Ureásica.
Según los resultados obtenidos la ureasa tiene un comportamiento optimo a
los 60 °C ya que a otras temperaturas es inestable y no se puede
determinar su función adecuada y no permite neutralizar el acido que se
agrega
Se obtuvieron los valores de los parámetros al evaluar la actividad ureasica, comose pudo observar en la tabla de Datos y en los de resultados donde observamos
el tiempo empleado que presenta una frecuencia igual.
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19
4. CONCLUSIONES
La ureasa es una importante enzima microbiana relacionada con la
descomposición de los compuestos orgánicos. La ureasa es considerada
constitutiva debido a que es sintetizada por ciertas bacterias sin tomar en
consideración la presencia ausencia de su sustrato, la urea.
Los resultados encontrados indican la actividad enzimática en las muestras
utilizadas donde variada La actividad ureasica de acuerdo a la cantidad de materia
orgánica y al PH.
Es conveniente realizar la determinación de la actividad ureasica en muestras
fresca sin dejar secar e inmediatamente después de su muestreo ya que la
muestra fresca es más representativa por la actividad biológica presente en ella.
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5. BIBLIOGRAFÍA
Granados, Jairo., (2011), Protocolo prácticas de laboratorio; ECAPMA;
UNAD.
Jairo Enrique Granados Moreno – Docente ECAPMA – Modulo de
Bioquímica.
Metabólica Universidad Nacional Abierta y a Distancia – UNAD.
La urea y sus diversas aplicaciones. recuperado de
http://www.quiminet.com/articulos/la-urea-y-sus-diversas-aplicaciones-
21306.htm? . (2007).
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PRÁCTICA 2
Carbono Orgánico y Capacidad Amortiguadora de suelos
RESUMEN
Los sistemas amortiguadores nos equilibran la presencia de sustancias acidas y
básicas para mantener el pH dentro de los limites fisiológicos.
Con la práctica de laboratorio se busca conocer cual sistema tiene mayor
capacidad amortiguadora y detectar su funcionamiento.
También se le denomina soluciones “Buffer” o “tampón” y son aquellas que se
oponen a los cambios de pH, cuando se les adicionan ácidos o álcalis (hidróxidos).
Su acción se basa principalmente en la absorción de hidrógenos (H+) o iones
hidroxilo (OH).
Una solución amortiguadora está conformada por una mezcla binaria de un ácido
débil y una sal del mismo acido proveniente de base fuerte o también una base yuna sal, de esa base proveniente de un ácido fuerte.
PALABRAS CLAVES: Acidas, básicas, pH, amortiguadora y fisiológica.
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22
INTRODUCCIÓN
Soluciones amortiguadoras también se le denomina soluciones “Buffer” o
“tampón” y son aquellas que se oponen a los cambios de pH, cuando se les
adicionan ácidos o álcalis (hidróxidos). Su acción se basa principalmente en la
absorción de hidrógenos (H+) o iones hidroxilo (OH).
Una solución amortiguadora está conformada por una mezcla binaria de un ácido
débil y una sal del mismo acido proveniente de base fuerte o también una base y
una sal, de esa base proveniente de un ácido fuerte.
La aplicación más importante de estas soluciones reside en el estudio de
regulación del equilibrio acido=base en los sistemas biológicos, por eso a nivel de
experimentos bioquímicos se utilizan para controlar el pH de reacciones in vitro.
Con el uso de estas soluciones podemos subir o bajar el pH de otras soluciones, o
lo que se conoce como acido o básico, esto lo medimos con una escala de 0 a 14
lo que nos da que 7 es neutro, por debajo de 7 ácido y más de 7 básico o alcalino
a distintas temperaturas el valor del pH neutro puede variar debido a la constante
del equilibrio del agua.
1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
1.1 MAPA CONCEPTUAL
CONCEPTOS CONCEPTOS
Suelo Actividad Microbiana
Aminoácidos Carbono orgánico
Grupos Funcionales Fases
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Fertilidad Mezcla heterogénea
Ácidos Orgánicos Enzimas
Componentes Bioquímicos Humus
Materia inorgánica Materia orgánica
Reacciones Bioquímicas Enzimáticas
(RBE) Sales MineralespH Nitrógeno total
Equilibrio ácido-base Carbohidratos
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1.2 MENTEFACTO CONCEPTUAL (Con base en los conceptos mostrados ,elaboren un mentefacto conceptual, en este espacio)
Fertilidad pH MicroorganismosBases
intercambiables
PotenciometríaTécnicasanalíticas
TitulaciónREDOX
Gravimetría
ComposiciónBioquímica
Volumetría Materia orgánicaConductividad
Eléctrica
Espectrofotometría CIC Sales Minerales Carbono orgánico
CaracterísticasFisicoquímicas
Amonio(NH4+)
FBN Suelo
1.3 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con análisisde suelo y mostrado en los siguientes link:
http://www.youtube.com/watch?v=Gm4Be6qHCRMhttp://www.youtube.com/watch?v=5eo-Fiuf1rY
http://www.youtube.com/watch?v=lXOAwkG_D2I
Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.
1.4 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE heurístico, relacionadocon el artículo científico anexo, denominado: Evaluación de parámetros de calidadpara la determinación de carbono orgánico en suelos., J,García Galvis y
Ballesteros, M (2005), Revista Colombiana de Química
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2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS (completar el cuadro)
Cuadro 1.lista de materiales y equipos utilizados en la práctica
MATERIAL Ó EQUIPO(Marca)
APLICACIÓNCapacidad y
Precisión Fotografía
Balanza analítica OhausPesada
(Gravimetría)210g;
0,0001g
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2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS (Completar el cuadro)
Cuadro 2.Reactivos utilizados en la práctica
REACTIVO(NOMBRE)FÓRMULA
MOLECULARCONCENTRACIÓN
Sulfato ferroso 1N
Dicromato de potasio 1N
2.3 PROCEDIMIENTOS (Completar el cuadro)
Cuadro 3.Técnicas analíticas utilizadas en el análisis fisicoquímico de suelos
VARIABLE(INDICADOR)EVALUADA(O)
TÉCNICA ANALÍTICAUTILIZADA
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pH Método potenciométrico
Carbono Orgánico(CO) %
Capacidad Amortiguadora
Nitrógeno total (NT) %
Materia Orgánica(MO) %
2.3.1 Protocolos de muestras analizadas (Elaborar una ficha ó formato quemuestre la información fundamental sobre el origen de cada una. Por ej:especie, nombre científico, lugar de muestreo, datos agroclimatológicos)
2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados que puedeincluír : Video ó fotografías que sustentan los procesos desarrollados ( enWord : hacer click en insertar, formas y diagrama de flujo)
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 TABLAS DE DATOS
*Incluír aquí las enviadas al profesor.*
3.2 ECUACIONES DE CÁLCULO
%Carbono Orgánico, Método de titulación volumétrica
%CO =(
Dónde:
%CO= porcentaje de carbono orgánico
VFeSO4= Volumen(mL) de sulfato ferroso
B = Volumen del sulfato ferroso gastado en el blanco
N = normalidad del sulfato ferroso
0.003= peso miliequivalente del carbono en gramos
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Wm= peso de la muestra en gramo
Materia Orgánica (%MO)
%MO= %CO 1,724
Dónde:%MO = Materia orgánica
%CO= porcentaje de carbono orgánico
1,724= constante de Van Bemmelen
Nitrógeno Total ( %NT)
%NT= %MO/20Donde:
%NT= Nitrógeno total
%MO = Materia orgánica
Carbono Orgánico por método colorimétrico-espectrofotométrico
[
] [
]
Donde:
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Sacarosa: C 12 H 22 O11
Capacidad amortiguadora (), Método Potenciométrico
Capacidad Amortiguadora ( Con respecto a NaOH, para muestras de suelos:
(
Capacidad Amortiguadora ( Con respecto a NaOH, para muestras de agua ysolución buffer
(
(
3.3 TABLAS DE RESULTADOS (Completar)
Tabla 1.Resultados obtenidos en el análisis fisicoquímico
VARIABLE
EVALUADADESCRIPCIÓN
Valor obtenido por:
Titulación Espectrofotometria
MOMateria orgánica
(%)
NTNitrógeno total
(%)
COCarbono
orgánico(%)
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pHPotencial deHidrógenos
CapacidadAmortiguadora
3.3.1 GRÁFICAS (*POR EJEMPLO*)
3.4 . DISCUSIÓN DE RESULTADOS
*EN ESTE ESPACIO SE DEBE REALIZAR UN ANÁLISIS INTERPRETATIVO YCOMPARATIVO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS, TRATANDO DECONFRONTAR LOS VALORES CON LA FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Y CONLA LITERATURA*
4. CONCLUSIONES
(Escribir mínimo Cinco)
0
1
2
3
4
5
PH CE(dS/m) CO(%) MO(%) NT(%) Ai
(%meq)
4.444.66
2.36
4.06
0.2
2.3
V a l o r
e s
p o r c e n t u a l e s
Indicadores Fisicoquímicos
Gráfica 1.Resultados análisis Fisicoquímico de suelo
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ESTAS SE DERIVAN DE LA DISCUSIÓN DE RESULTADOS
5. BIBLIOGRAFÍA
(UTILIZADA Y CONSULTADA, MÍNIMO 6 REFERENCIAS EN NORMAS APA)
PRÁCTICA 4
Actividad Catalítica de Catalasa (ACAT) en muestras de
origen Biológico
RESUMEN
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(Redactar en máximo 10 líneas, en un solo texto: Qué se hizo, cómo sedesarrolló, qué resultados se encontraron, cómo se interpretaron estosresultados, qué se concluyó)
(Máximo en 8 líneas):
PALABRAS CLAVES (Escribir 5):
INTRODUCCIÓN
(se debe escribir en 17 líneas)
1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
1.1 MENTEFACTO CONCEPTUAL (elaboren un mentefacto conceptual, eneste espacio, con base en los siguientes conceptos)
CONCEPTO CONCEPTO
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Desdobla el Radical H2O2 Actividad catalítica
El sustrato es el peróxido pH y T óptimos
Óxido-reductasa Catalasa (CAT)
El sustrato es la úrea Peroxidasa
Peroxisoma Produce H2O y O2
Cinética enzimática deMichaellis-Menten
Parámetros cinéticos(Km yVmáx)
Impide la acumulación deperóxido
Participa en la foto-respiración
Es amidohidrolasa RBE REDOX
1.2 MAPA CONCEPTUAL (Con base en los siguientes conceptos claveselaboren un mapa conceptual en este espacio, utilizando conectoresadecuados)
CONCEPTO CONCEPTO
Catalasa(CAT) Enzima óxido-reductasa
Familia peroxidasas Células animales y vegetales
Peroxisoma Peroxidación lipídica
RBE REDOX H2O2 H2O + O2
Cinética Michaeliana Permanganometría
Coenzima Apoenzima
Grupo Hemo(Fe+3) Proteína cuaternaria
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Homotetramérica Grasas
Mitocondria Oxidación
1.3 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con actividadenzimática y mostrados en los siguientes link:
http://www.youtube.com/watch?v=WOAcp15VLJ0
http://www.youtube.com/watch?v=0Jr7gxy3bKI
Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.
1.4 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE Heurístico relacionado conel artículo científico anexo, denominado: Catalasa, Peroxidasa yPolifenoloxidasa en pitaya amarilla (acanthocereus pitajaya): maduración ysenescencia
2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS(completar el cuadro)
Cuadro 1. Lista de materiales y equipos utilizados en la práctica
MATERIAL Ó EQUIPO(Marca)
APLICACIÓNCapacidad y
Precisión Fotografía
Balanza analítica OhausPesada
(Gravimetría)210g;
0,0001g
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2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS(Completar el cuadro)
Cuadro 7. Reactivos utilizados en la práctica
REACTIVO(NOMBRE) FÓRMULA MOLECULAR CONCENTRACIÓN
Peróxido de hidrógeno H2O2 0,05M
2.3 PROCEDIMIENTOS
2.3.1 Protocolos de muestras analizadas (Elaborar una ficha ó formato quemuestre la información fundamental sobre el origen de cada una. Por ej:especie, nombre científico, lugar de muestreo, datos agroclimatológicos,animales, etapa productiva, alimentación etc.)
2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados que puede
incluír : Video ó fotografías que sustentan los procesos desarrollados ( enWord : hacer click en insertar, formas y diagrama de flujo)
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 TABLAS DE DATOS (Completar)
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INCLUÍ AQUÍ LAS ENVIADAS AL PROFESOR
3.2 CÁLCULOS
Calcular la actividad catalítica de la catalasa (ACAT) de cada una de lasmuestras trabajadas.
3.3 TABLAS DE RESULTADOS (Completar)Tabla 5. Valores de actividad de catalasa en las muestras estudiadas
TubosMuestras
AnalizadasACAT (µmoles de
H2O2 / min)
1
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2
3
4
3.3.1 GRÁFICAS
(Realizarlas en Excel y luego importarlas a Word en este documento)
3.4 . DISCUSIÓN DE GRÁFICAS Y RESULTADOS
*EN ESTE ESPACIO SE DEBE REALIZAR UN ANÁLISIS INTERPRETATIVO YCOMPARATIVO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS, TRATANDO DECONFRONTAR LOS VALORES CON LA FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Y CONLA LITERATURA*
4. CONCLUSIONES
(Escribir mínimo Cinco)
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*ESTAS SE DERIVAN DE LA DISCUSIÓN DE RESULTADOS
5. BIBLIOGRAFÍA
(UTILIZADA Y CONSULTADA, MÍNIMO 6 REFERENCIAS EN NORMAS APA)