UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
“GRADO DE CONTAMINACIÓN DEL HILO RETRACTOR PREVIO AL USO
EN EL PACIENTE, EN LA CLÍNICA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”
Trabajo de titulación previo a la obtención del título de Odontólogo
Autor: Uyana Guerrero Giovanny Vladimir
Tutor: Dr. Flores Narváez Paúl Joel
Cotutora: Dra. Dona Vidale Marina Antonia
Quito, Agosto 2018
ii
DERECHOS DE AUTOR
Yo GIOVANNY VLADIMIR UYANA GUERRERO en calidad de autor del trabajo de
investigación “GRADO DE CONTAMINACIÓN DEL HILO RETRACTOR
PREVIO AL USO EN EL PACIENTE, EN LA CLÍNICA DE LA FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, autorizo a
la Universidad Central del Ecuador a hacer el uso del contenido total o parcial que me
pertenece, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido con los
artículos 5, 6, 8, 19 y demás pertenecientes a la Ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
También, autorizo a la Universidad Central del Ecuador realizar la digitalización y
publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo
dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
FIRMA:
GIOVANNY VLADIMIR UYANA GUERRERO
C.I. 1722489075
iii
INFORME FINAL DE APROBACIÓN DE TESIS
Yo, Dr. PAÚL JOEL FLORES NARVÁEZ, con C.I.: 0801939786 en mi carácter de Tutor
del Trabajo de Grado, presentado por el señor GIOVANNY VLADIMIR UYANA
GUERRERO, para optar por el título de Odontólogo, cuyo título es: “GRADO DE
CONTAMINACIÓN DEL HILO RETRACTOR PREVIO AL USO EN EL
PACIENTE, EN LA CLÍNICA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR” Considero que dicho trabajo reúne los
requisitos y méritos suficientes para ser sometido a la presentación público y evaluación
por parte del jurado examinador que se designe.
En la ciudad de Quito, a los 6 días del mes de Julio del 2018
FIRMA:
DR. PAÚL JOEL FLORES NARVÁEZ
C.I. 0801939786
iv
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL / TRIBUNAL
El tribunal constituido por:
Luego de receptar la presentación oral del trabajo de titulación previo a la obtención del
título de Odontólogo General, presentado por el Sr. Giovanny Vladimir Uyana Guerrero
Con el título “GRADO DE CONTAMINACIÓN DEL HILO RETRACTOR PREVIO
AL USO EN EL PACIENTE, EN LA CLÍNICA DE LA FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”
Emite el siguiente veredicto:
Fecha: …………………
Para constancia de lo actuado firman:
NOMBRE Y APELLIDO CALIFICACIÓN FIRMA
Presidente FREIRE ANDRADE ALICIA ____________ ____________
Vocal 1 CAICEDO MARIA FERNANDA ____________ ____________
v
DEDICATORIA
Por ser mis guías, mis consejeros y por brindarme todo su apoyo y confianza, este trabajo
es dedicado con mucho cariño y amor a los seres que más amo en este mundo, mi familia.
A mis padres por todo su apoyo, por todos sus esfuerzos, por toda su comprensión y por
demostrarme q a pesar de los problemas la familia siempre será familia, Gracias por todo.
A mis hermanos Paúl, Gioca por ser mis segundos padres, que me apoyaron y siempre
estuvieron pendiente de mi.
A mis sobrinos Santiago, Daniel, Paula y Leonardo que a pesar de sus locuras son la
alegría de vida y mi respiro en un momento de angustia, los quiero demasiado.
vi
AGRADECIMIENTOS
En primera instancia un agradecimiento enorme a mis padres, que depositaron su entera
confianza y brindaron el apoyo incondicional con el cual este camino se hizo más
llevadero.
A mis hermanos, sobrinos y Alina que son piezas fundamentales en mi vida, brindando su
apoyo, alegría y cariño, gracias por todo.
Al ser más puro y generoso, mi abuelita Mercedes que con gran sacrificio sacó adelante a
sus hijos, y hoy en día, nosotros somos el fruto de todo su esfuerzo.
Agradezco a mis primos y tíos que de igual manera me supieron guiar y ayudar en todo lo
que siempre necesité durante la carrera.
Al Dr. Paúl Flores que gracias a su ayuda y conocimientos supo guiar de la mejor manera
este proyecto.
A los docentes y a todo el personal de la Universidad Central del Ecuador, y en especial al
personal que conforma la Facultad de Odontología, gracias por abrirme sus puertas.
A mis amigos, Bryan, Rubén, Martin con los cuales tengo los primeros y mejores
recuerdos de la universidad.
Y un inmenso agradecimiento a Viviana, Karina, Katty, Dennis, Jhonathan, Edith, Paola,
Mercy, Erika, Jahir, Mayra, Michelle, Vanessa, Karina, Danilo, que fueron y serán una de
las cosas más bonitas que obtuve de la carrera universitaria, gracias por su amistad.
vii
ÍNDICE DE CONTENIDOS
DERECHOS DE AUTOR ...................................................................................................................ii
INFORME FINAL DE APROBACIÓN DE TESIS .......................................................................... iii
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL / TRIBUNAL ................................................... iv
DEDICATORIA ................................................................................................................................. v
AGRADECIMIENTOS ..................................................................................................................... vi
ÍNDICE DE CONTENIDOS ............................................................................................................ vii
ÍNDICE DE GRÁFICOS ................................................................................................................... xi
ÍNDICE DE FIGURAS ..................................................................................................................... xii
RESUMEN ....................................................................................................................................... xiv
ABSTRACT ...................................................................................................................................... xv
INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................... 16
CAPÍTULO I .................................................................................................................................... 17
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ......................................................................... 17
1.1.1 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA ..................................................................... 17
1.2 OBJETIVOS .................................................................................................................... 18
1.2.1 OBJETIVO GENERAL ........................................................................................... 18
1.2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ................................................................................... 18
1.3 HIPÓTESIS ...................................................................................................................... 19
1.3.1 HIPÓTESIS DE INVESTIGACIÓN H1. ........................................................................ 19
1.3.2 HIPÓTESIS NULA H0. .................................................................................................. 19
1.4 JUSTIFICACIÓN............................................................................................................. 20
CAPÍTULO II .................................................................................................................................. 21
2. MARCO TEÓRICO ................................................................................................................. 21
2.1 CONTAMINACIÓN ........................................................................................................ 21
2.2 TIPOS DE CONTAMINACIÓN ..................................................................................... 21
2.2.1 CONTAMINACIÓN BIOLÓGICA ................................................................................ 21
2.2.2 CONTAMINACIÓN CRUZADA .................................................................................. 21
2.3 TIPOS DE CONTAMINACIÓN CRUZADA ................................................................. 22
2.3.1 CONTAMINACIÓN CRUZADA DIRECTA ................................................................ 22
2.3.2 CONTAMINACIÓN CRUZADA INDIRECTA ............................................................ 22
2.4 FUENTES DE CONTAMINACIÓN BIOLÓGICA ........................................................ 22
2.4.1 PROFESIONAL .............................................................................................................. 22
2.4.2 PACIENTE...................................................................................................................... 22
viii
2.4.3 INSTRUMENTAL .......................................................................................................... 22
2.5 RIESGO BIOLÓGICO .................................................................................................... 23
2.6 TIPOS DE AGENTES BIOLÓGICOS ............................................................................ 23
2.7 INFECCIÓN .................................................................................................................... 23
2.7.1 VIRULENCIA ................................................................................................................ 23
2.7.2 PRESENCIA NUMÉRICA ............................................................................................. 23
2.7.3 HUÉSPED SUSCEPTIBLE ............................................................................................ 24
2.7.4 VÍA DE ACCESO ........................................................................................................... 24
2.8 VÍAS DE TRANSMISIÓN .............................................................................................. 24
2.8.1 TRANSMISIÓN POR VÍA DIRECTA .......................................................................... 24
2.8.2 TRANSMISIÓN POR VÍA INDIRECTA ...................................................................... 24
2.8.3 TRANSMISIÓN POR VÍA AÉREA .............................................................................. 24
2.9 CLASIFICACIÓN DE LOS MICROORGANISMOS .................................................... 25
2.9.1 BACTERIAS ................................................................................................................... 25
2.9.1.1 ESTREPTOCOCOS ................................................................................................. 26
2.9.1.2 STAPHYLOCOCCUS ............................................................................................. 26
2.9.1.3 BACILOS GRAM POSITIVOS .............................................................................. 26
2.9.1.4 BACILOS GRAM NEGATIVOS ............................................................................ 27
2.9.2 HONGOS ........................................................................................................................ 27
2.9.3 LEVADURAS ................................................................................................................. 27
2.10 ENFERMEDADES PRODUCIDAS POR LOS MICROORGANISMOS ...................... 27
2.10.1 ENFERMEDADES DE TIPO VIRAL .......................................................................... 27
2.10.1.1 TUBERCULOSIS .................................................................................................. 27
2.10.1.2 HEPATITIS ............................................................................................................ 28
2.10.1.3 VIH ......................................................................................................................... 29
2.10.2 ENFERMEDADES PRODUCIDAS POR BACTERIAS........................................ 29
2.10.2.1 FARINGOAMIGDALITIS .................................................................................... 29
2.11 IDENTIFICACIÓN BACTERIANA ............................................................................... 29
2.11.1 RECOLECCIÓN Y MEDIOS DE TRANSPORTE ...................................................... 30
2.11.2 TRASPORTE DE LAS MUESTRAS ........................................................................... 30
2.11.3 MEDIO DE CULTIVO ................................................................................................. 30
2.11.3.1 AGAR SANGRE .................................................................................................... 31
2.11.4 SIEMBRA ..................................................................................................................... 31
2.11.4.1 SIEMBRA POR AGOTAMIENTO POR ESTRÍAS ............................................. 32
2.12 MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD .................................................................................. 32
2.13 HILO RETRACTOR........................................................................................................ 33
ix
2.13.1 TIPO DE HILOS RETRACTORES.............................................................................. 33
2.13.1.1 HILOS RETRACTORES ENTRELAZADOS ...................................................... 33
2.13.1.2 HILOS RETRACTORES TRENZADOS .............................................................. 33
7.13.2 ULTRAPAK.................................................................................................................. 33
CAPÍTULO III ................................................................................................................................. 34
3. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................................................ 34
3.1 DISEÑO DE INVESTIGACIÓN ..................................................................................... 34
3.2 POBLACIÓN Y MUESTRA DE ESTUDIO ................................................................... 34
3.3 CRITERIOS DE INCLUSIÓN Y EXCLUSIÓN ............................................................. 35
3.3.1 CRITERIOS DE INCLUSIÓN ....................................................................................... 35
3.3.2 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN ...................................................................................... 35
3.4 CONCEPTUALIZACIÓN DE VARIABLES ................................................................. 36
3.5 OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES ................................................................ 37
3.6 ESTANDARIZACIÓN .................................................................................................... 38
3.7 MANEJO Y MÉTODO DE RECOLECCIÓN DE DATOS ............................................ 38
3.7.1 OBTENCIÓN DE MUESTRAS ..................................................................................... 39
3.7.2 TRANSPORTE DE MUESTRAS................................................................................... 50
3.7.3 CULTIVO ....................................................................................................................... 51
3.7.4 SIEMBRA ....................................................................................................................... 52
3.7.5 OBSERVACIÓN DE LOS RESULTADOS ................................................................... 54
3.7.6 ELIMINACIÓN DE DESECHOS .................................................................................. 58
3.8 TÉCNICAS PARA PROCESAMIENTO Y ANÁLISIS ESTADÍSTICOS DE DATOS 58
3.9 ASPECTOS BIOÉTICOS ................................................................................................ 58
3.9.1 RIESGOS POTENCIALES DEL ESTUDIO .................................................................. 59
3.9.2 BENEFICIOS DEL ESTUDIO ....................................................................................... 59
CAPÍTULO IV ................................................................................................................................. 60
4. RESULTADOS ........................................................................................................................ 60
CAPÍTULO V .................................................................................................................................. 79
5.1 DISCUSIÓN .................................................................................................................... 79
5.2 CONCLUSIONES ........................................................................................................... 81
5.3 RECOMENDACIONES .................................................................................................. 82
5.4 BIBLIOGRAFÍA .............................................................................................................. 83
x
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Clasificación de las Bacterias ............................................................................................ 25
Tabla 2. Clasificación de Medios de Cultivos ................................................................................. 31
Tabla 3. Conceptualización de Variables ........................................................................................ 36
Tabla 4. Operacionalización de Variables ....................................................................................... 37
Tabla 5. Pruebas de Normalidad ..................................................................................................... 61
Tabla 6. Equivalencias .................................................................................................................... 61
Tabla 7. Grupo Personal 24 h*Grupo personal 48 H Tabulación Cruzada ..................................... 62
Tabla 8. Grupo Estudiantes 24 h*Grupo Estudiantes 48 H tabulación cruzada .............................. 63
Tabla 9. Control 24 h*Control 48 H Tabulación Cruzada .............................................................. 64
Tabla 10. Comparación a las 24 Horas ............................................................................................ 65
Tabla 11. Resumen: 24 horas .......................................................................................................... 68
Tabla 12. Comparación a las 48 horas ............................................................................................ 69
Tabla 13. Resumen: 48 horas .......................................................................................................... 72
Tabla 14. Prueba de Diferencias ...................................................................................................... 73
Tabla 15. Cuadro de Diferencias ..................................................................................................... 76
xi
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico 1. Prueba de Kruskal-Wallis .............................................................................................. 66
Gráfico 2. Prueba Dos a Dos ........................................................................................................... 67
Gráfico 3. Prueba Kruskal-Wallis ................................................................................................... 70
Gráfico 4. Prueba Dos a Dos ........................................................................................................... 71
Gráfico 5. Prueba de Kruskal-Wallis .............................................................................................. 74
Gráfico 6. Prueba Dos a Dos ........................................................................................................... 75
Gráfico 7. Comparación 24 Horas ................................................................................................... 77
Gráfico 8. Comparación 48 Horas ................................................................................................... 77
Gráfico 9. Comparación de Diferencias .......................................................................................... 78
xii
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1.Equipo de protección ........................................................................................................ 39
Figura 2. Hilo Retractor .................................................................................................................. 40
Figura 3. Papel Encerado para colocar el hilo ................................................................................. 40
Figura 4. Obtención del Hilo Retractor ........................................................................................... 41
Figura 5.Corte del Hilo Retractor .................................................................................................... 41
Figura 6. Muestra de Hilo Retractor ............................................................................................... 42
Figura 7. Pedido del Hilo Retractor en Materiales Dentales ........................................................... 43
Figura 8. Entrega del Hilo Retractor en Vaso Dapen ...................................................................... 43
Figura 9. Muestra Transportada al Cubículo del Estudiante ........................................................... 44
Figura 10. Hilo Manipulado por Estudiante .................................................................................... 44
Figura 11. Hilo Manipulado antes de llegar a boca ......................................................................... 45
Figura 12. Instrumentos y Materiales .............................................................................................. 46
Figura 13.Retiro de Pinza de Funda de Esterilizar .......................................................................... 46
Figura 14.Retiro de Vaso Dapen de Funda de Esterilizar ............................................................... 47
Figura 15.Obtención y Corte de Hilo Retractor Mediante Pinzas ................................................... 47
Figura 16. Colocación del Hilo en el Vaso Dapen .......................................................................... 48
Figura 17. Colocación de Muestra en Tubos de Ensayo con Tioglicolato ...................................... 48
Figura 18. Tubo de Ensayo sellado ................................................................................................. 49
Figura 19. Rotulación de Tubo de Ensayo ...................................................................................... 49
Figura 20. Tubos de Ensayo en Gradillas ....................................................................................... 50
Figura 21. Tubos de Ensayo en Cooler ........................................................................................... 50
Figura 22. Transporte de Muestras .................................................................................................. 51
Figura 23. Muestras en la Estufa ..................................................................................................... 51
Figura 24. Caja Petri con Agar Sangre ............................................................................................ 52
Figura 25. Hisopo introducido en Tubo de Ensayo ......................................................................... 53
Figura 26. Siembra por Estría Cruzada ........................................................................................... 53
Figura 27. Incubación de las Muestras ............................................................................................ 54
Figura 28. Grupo A 24 Horas .......................................................................................................... 55
Figura 29. Grupo A 48 Horas .......................................................................................................... 55
Figura 30. Grupo B 24 Horas .......................................................................................................... 56
Figura 31. Grupo B 48 Horas .......................................................................................................... 56
Figura 32. Grupo C 24 Horas .......................................................................................................... 57
Figura 33. Grupo C 48 Horas .......................................................................................................... 57
xiii
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo 1. Aceptación de Tutorias ..................................................................................................... 86
Anexo 2. Aprobación del Tema ....................................................................................................... 88
Anexo 3. Idoneidad Ética y Experticia del Tutor ............................................................................. 91
Anexo 4. Idoneidad y Experticia del Estudiante .............................................................................. 92
Anexo 5. Declaración de Conflictos de Interés del Tutor ................................................................ 93
Anexo 6. Declaración de Conflictos de Interés del Investigador ..................................................... 94
Anexo 7. Oficio Dirigido a la Facultad de Ciencias Químicas ........................................................ 95
Anexo 8. Oficio para Ingreso a Clínica de la FO de la UCE ........................................................... 96
Anexo 9. Autorización para Eliminación de Desechos en Facultad de Ciencias Químicas ............ 97
Anexo 10. Hoja de Recolección de Datos ........................................................................................ 98
Anexo 11. Protocolo de Manejo de Desechos Infecciosos .............................................................. 99
Anexo 12. Certificado del Laboratorio de Ciencias Químicas....................................................... 100
Anexo 13. Resultados .................................................................................................................... 101
Anexo 14. Certificado del Comité de Ética ................................................................................... 102
Anexo 15. Solicitud de Ajuste de Metodología ............................................................................. 103
Anexo 16. Renuncia del Trabajo Estadístico ................................................................................. 108
Anexo 17. Certificado del Abstract ................................................................................................ 109
Anexo 18. Certificado del URKUND ............................................................................................ 110
xiv
GRADO DE CONTAMINACIÓN DEL HILO RETRACTOR PREVIO AL USO EN
EL PACIENTE, EN LA CLÍNICA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE
LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
Autor: Giovanny Vladimir Uyana Guerrero
Tutor: Dr. Paúl Flores
RESUMEN
El hilo retractor en odontología es un material muy importante en procedimientos de prótesis
dentales o restauraciones tipo V; al ser manipulado por el operador antes de llegar al paciente, este
puede llegar a ser una fuente potencial de infección si es que no se le da el debido cuidado.
Se obtuvo 60 muestras de hilos retractores previo a su uso, las mismas que fueron divididas en tres
grupos: Grupo A:20 muestras obtenidas directamente de los tubos dispensadores que posee el
departamento de materiales dentales de la Facultad de Odontología de la Universidad Central, estas
muestras fueron entregadas por dicho personal, grupo B 20 muestras obtenidas de estudiantes, que
previamente retiren el hilo retractor del departamento de materiales dentales y lo manipulen; y un
grupo C, controlado por el investigador, en el cual el hilo fue retirado del departamento de
materiales en vasos dapens esterilizados en funda, posterior a esto se recogió la muestra.
Las muestras fueron colocadas en tubos de ensayo con 2ml de caldo de tioglicolato, se incubaron
las muestras por 48 horas a 36ºC. Por cada grupo se prepararon 20 cajas Petri con Agar sangre, en
los cuales se realizó una descarga inicial con hisopos estériles de cada cultivo, seguido de siembra
por estría cruzada y se incubaron por 24 horas a 36ºC. Finalmente, se realizó la primera lectura de
los resultados a las 24 horas y la segunda a las 48 horas; y el análisis estadístico al utilizar el
programa SPSS.
El objetivo de esta investigación fue determinar con estudio in vitro el grado de contaminación
presente en los hilos retractores previo al uso en los pacientes.
Este proyecto representa un aporte para la comunidad odontológica al evidenciar el grado de
contaminación presente en hilos retractores y tomar normas de bioseguridad, para evitar la
propagación de agentes patógenos mediante la contaminación cruzada.
PALABRAS CLAVES: Hilo Retractor / Infección / Tioglicolato / Bioseguridad/
Agentes Patógenos / Contaminación Cruzada
xv
DEGREE OF CONTAMINATION OF THE RETRACTOR THREAD PRIOR TO
USE IN THE PATIENT, IN THE CLINIC OF THE FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
Author: Giovanny Vladimir Uyana Guerrero
Tutor: Paúl Flores MD
ABSTRACT
The retractor thread in dentistry is a very important material in procedures of dental prostheses or
restorations type V; When manipulated by the operator before reaching the patient, it can become a
potential source of infection if due care is not taken.
60 samples of retractor threads were obtained prior to their use, which were divided into three groups:
Group A: 20 samples obtained directly from the dispensing tubes owned by the department of dental
materials of the Faculty of Dentistry of the Universidad Central, these samples were delivered by
said personnel; group B: 20 samples obtained from students, who previously removed the retractor
thread from the department of dental materials and manipulated it; and a group C, controlled by the
researcher, in which the thread was removed from the materials department in dapens cups sterilized
in a bag, after this the sample was collected.
The samples were placed in test tubes with 2 ml of thioglycolate broth, the samples were incubated
for 48 hours at 36°C. For each group, 20 Petri dishes with blood agar were prepared, in which an
initial discharge with sterile swabs of each culture was performed, followed by cross-stripe seeding
and incubated for 24 hours at 36ºC. Finally, the first reading of the results will be made at 24 hours
and the second at 48 hours; and the statistical analysis when using the program SPSS.
The objective of this investigation was to determine with in vitro study the degree of contamination
present in the retractor threads prior to use in patients.
This project represents a contribution to the dental community by evidencing the degree of
contamination present in retractor threads and taking biosafety rules, to prevent the spread of
pathogens through cross-contamination.
KEYWORDS: Retractor Thread / Infection / Thioglycollate / Biosafety / Pathogen Agents
/ Cross Contamination
Yo, CERTIFICO que esta traducción es fiel copia del original en español.
I CERTIFY that the above is a true and correct translation from the document in Spanish.
10 Julio/July 2018.
Carlos M. Montalvo Jiménez
TRADUCTOR/TRANSLATOR
CI: 1705261632 Cel.: 0992273822
Traducido en “Fast On Line” 0999929248, 022222808
16
INTRODUCCIÓN
La actividad odontológica se desarrolla en un ambiente muy contaminado, debido a que
todo paciente es considerado potencialmente como portador de enfermedades, el contacto
con secreciones orales, respiratorias y sangre del paciente, uso de instrumental y equipos
odontológicos, manipulación de instrumentos de alta y baja velocidad, entre otros, siendo
necesario aplicar medidas de bioseguridad, una de ellas, el uso de equipos de protección
individual EPI como guantes, gorros, mascarillas, protectores oculares, para proteger al
profesional y a los pacientes. (1)
No se requiere necesariamente de una práctica quirúrgica para estar expuestos a elementos
infecciosos. Encontramos cualquier tipo de contaminantes en la práctica dental, los cuales
pueden ser: sangre, saliva, fluido gingival, aerosoles, erosiones de la piel y fómites. La bio-
película se encuentra en todas las superficies sólidas, aquellas que tienen contacto directo
con fluidos de la cavidad bucal y los instrumentos que se utilizan diariamente en la
atención odontológica. (2)
El presente estudio se ha visto potenciado debido a que los estudiantes de noveno semestre
Facultad Odontología de la Universidad Central del Ecuador utilizan con mucha frecuencia
el hilo retractor en pacientes que llegan para realizarse una prótesis fija o simplemente una
restauración clase V en la clínica, esta investigación pretende dar información con los
datos obtenidos de la existencia de contaminación en los hilos retractores debido a la
manipulación previa, y de esta manera concientizar a los estudiantes y tomar medidas
adecuadas para evitar contaminación cruzada dentro de la clínica.
17
CAPÍTULO I
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
En el ambiente Odontológico, se desarrollan varios procedimientos que favorecen a la
contaminación del ambiente de trabajo, por lo que, todo el personal: profesionales y
pacientes están expuestos a una gran cantidad de patógenos que son capaces de producir
infecciones en dicho personal, debido a las intervenciones clínicas o quirúrgicas que se
desempeñan diariamente en este ambiente. Esta contaminación se da cuando existe un
contacto directo o indirecto a través de instrumental, aerosoles y superficies contaminadas
con sangre y otros fluidos corporales, incluso materiales dentales. (3)
Por otra parte, la practica odontológica se hace peligrosa debido a que tanto pacientes
como profesionales pueden ser portadores de enfermedades, esto ocurre por el contacto
repetitivo entre profesional y paciente al cual siempre se lo considerará como un portador
potencial de enfermedades, por lo cual es necesario adoptar medidas de protección. (4)
El presente estudio tiene como finalidad evaluar los niveles de contaminación en hilos
retractores manipulados por los estudiantes de la Facultad de Odontología de la
Universidad Central del Ecuador antes del contacto con el paciente, con los datos
obtenidos se espera brindar información sobre este tema, generar conciencia y fomentar el
correcto manejo de este material, y así lograr una mejor atención a la comunidad.
1.1.1 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿Cuál es el grado de contaminación que tienen los hilos retractores manipulados por los
estudiantes que realizan actividades en la clínica integral de la Facultad de Odontología de
la Universidad Central del Ecuador antes de ser utilizados en el paciente?
18
1.2 OBJETIVOS
1.2.1 OBJETIVO GENERAL
Identificar el grado de contaminación en los hilos retractores que manipulan los
estudiantes de noveno semestre, previo al uso en el paciente, en la clínica de la
Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, periodo 2018-2018.
1.2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Identificar el grado de contaminación que se encuentran presentes en los hilos
retractores mediante medios de cultivo.
Comparar el grado de contaminación del grupo control vs el grupo experimental.
Brindar información de interés a las autoridades pertinentes para el control y
prevención de infecciones cruzadas en la Clínica de Pregrado de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
19
1.3 HIPÓTESIS
1.3.1 HIPÓTESIS DE INVESTIGACIÓN H1.
Los hilos retractores manipulados por los estudiantes presentarán mayor
contaminación, en relación a los hilos retractores entregados por el personal de
Materiales Dentales de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del
Ecuador.
1.3.2 HIPÓTESIS NULA H0.
Los hilos retractores manipulados por los estudiantes presentarán menor o igual
contaminación, en relación a los hilos retractores entregados por el personal de
Materiales Dentales de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del
Ecuador.
20
1.4 JUSTIFICACIÓN
El odontólogo como profesional de la salud siempre estará expuesto a una gran cantidad de
contaminación, que se generan durante el ejercicio de la profesión producto del uso
continuo de instrumentos de alta velocidad, el contacto con secreciones orales,
respiratorias y sangre de los pacientes produciendo así un ambiente de contaminación y
transmisión de enfermedades, dando como resultado la propagación de enfermedades que
pueden afectar tanto a la clínica, auxiliar, odontólogo y paciente. (3)
Por lo tanto, el presente estudio tiene la finalidad de evaluar los niveles de contaminación
de los hilos retractores manipulados por estudiantes de la Clínica Integral de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador, previo al uso en el paciente.
Con la finalidad de brindar información valiosa a las autoridades pertinentes para el control
y prevención de infecciones cruzadas en la Clínica Integral de la Facultad de Odontología
de la Universidad Central del Ecuador.
Definiendo de manera cualitativa la presencia o la ausencia de microorganismos patógenos
en los hilos retactores. Información que se obtendrá en 3 semanas en la Facultad de
Odontología de la Universidad Central.
21
CAPÍTULO II
2. MARCO TEÓRICO
2.1 CONTAMINACIÓN
Se ha conocido a la contaminación como el efecto que esta produce de alterar o dañar el
estado natural de equilibrio de un medio u objeto ya sea mediante “la transmisión y
difusión de humos o gases tóxicos a medios como la atmósfera y el agua, como también a
la presencia de polvos y gérmenes microbianos provenientes de los desechos de la
actividad del ser humano” (3)
2.2 TIPOS DE CONTAMINACIÓN
Campos (2003) describe que se pueden encontrar distintas clases de contaminación en
diferentes medios y generada por diversas fuentes como la contaminación biológica,
ambiental, del suelo, del agua; sin embargo, en la atención odontológica, la contaminación
biológica es de vital importancia puesto que es la principal causa de las infecciones
transmisibles que se pueden producir en el profesional odontólogo, paciente u otros. (4)
2.2.1 CONTAMINACIÓN BIOLÓGICA
La contaminación biológica consiste principalmente en la presencia de organismos
patógenos en el ambiente, este tipo de contaminación se encuentra, sobre todo, en gran
frecuencia en el agua y en los alimentos y estos agentes patógenos son los responsables de
infecciones en el ser humano. (5)
2.2.2 CONTAMINACIÓN CRUZADA
Higashida (2009) dice que la contaminación cruzada “consiste en el paso de un agente
infeccioso de una persona a otra a través de un objeto, instrumento o material
contaminado”. Este tipo de contaminación se puede dar por la transmisión de
microorganismos patógenos principalmente de una persona a otra, o a través de objetos
contaminados. Por lo tanto, tenemos dos tipos de contaminación cruzada: directa e
indirecta respectivamente. (6)
22
2.3 TIPOS DE CONTAMINACIÓN CRUZADA
2.3.1 CONTAMINACIÓN CRUZADA DIRECTA
“Transferencia directa y esencialmente inmediata de agentes infecciosos a una puerta de
entrada receptiva por donde se producirá la infección” o “proyección directa (diseminación
de gotitas al toser, hablar o estornudar) hasta un metro o menos” (7)
2.3.2 CONTAMINACIÓN CRUZADA INDIRECTA
“Mediante vehículos de transmisión: objetos o materiales contaminados, productos
biológicos, incluidos sangre, suero, plasma, tejidos u órganos; o cualquier sustancia que
sirva de intermediario” (7)
2.4 FUENTES DE CONTAMINACIÓN BIOLÓGICA
2.4.1 PROFESIONAL
El profesional odontólogo actúa como uno de los principales reservorios de
microorganismos patógenos siempre y cuando haya sido infectado o esté cursando algún
tipo de enfermedad infecciosa e infectar a la gente con quien entra en contacto. (8)
2.4.2 PACIENTE
En la consulta odontológica los pacientes se consideran como un reservorio, que es
potencialmente infeccioso ya que este puede ocultar su padecimiento o ser portador de
microorganismos patógenos que desconoce; y la odontología al ser una práctica constante
que se realiza en boca es muy fácil el contagio de todos los microorganismos que el
paciente posee. (8)
2.4.3 INSTRUMENTAL
Todo instrumental odontológico y todo artículo que se encuentre dentro del ambiente
odontológico se convierten en objetos capaces de albergar y diseminar microorganismos
por esto se debe realizar acciones de bioseguridad como la desinfección y esterilización
adecuada. Es por esto que en el campo de la odontología se debe cuidar la salud del
profesional, paciente y de toda persona que esté inmersa en este ambiente. (8)
23
Negroni (2009) acotó que los objetos inanimados, techos y paredes, insectos y aerosoles
son capaces de retener y vehiculizar microorganismos por lo que se les debe brindar un
mantenimiento de limpieza diario en algunos casos y en otros semanal y mensual. (9)
2.5 RIESGO BIOLÓGICO
“Es la probabilidad de infectarse con un patógeno en la actividad laboral”. “Este tipo de
riesgo se deriva de la manipulación o exposición a agentes patógenos, que aunque existe en
todos los ambientes, tiene una mayor magnitud en hospitales centro de investigación
biomédica”. (10)
2.6 TIPOS DE AGENTES BIOLÓGICOS
“Los agentes biológicos son bacterias, virus, hongos, parásitos, sus toxinas, o todos ellos,
los cuales poseen ciertas características a considerar, como patogenicidad, virulencia y
poder antigénico”. (6)
“Son microorganismos, cultivos de células y endoparásitos humanos susceptibles de
originar infección, alergia o toxicidad. Por lo tanto, trata exclusivamente como agentes
biológicos algunos altamente peligrosos, capaces de causar alteraciones en la salud
humana” (10)
2.7 INFECCIÓN
Se denomina infección cuando un microorganismo, invade, crece y se multiplica en el
organismo de una persona provocando una enfermedad, para que una infección exista se
necesita la presencia de cuatro elementos que determina la aparición de la cadena
infecciosa: Virulencia del agente causal, presencia en número significativo, susceptibilidad
del huésped y vía de acceso. (11)
2.7.1 VIRULENCIA
Corresponde al grado de patogenicidad, toxicidad, de infección, y la agresividad de
microorganismos sobre el huésped con el fin de causar enfermedad, y la única manera de
defenderse es evitando el contacto o por medio de la inmunización. (12)
2.7.2 PRESENCIA NUMÉRICA
Corresponde al número de microorganismos presentes en el huésped, estos
microorganismos deben estar en suficiente cantidad para producir enfermedad. (12)
24
2.7.3 HUÉSPED SUSCEPTIBLE
Se refiere al estado de salud de una persona, el huésped debe presentar defensas bajas,
estar sometido a un grado considerable de estrés y no tener buena salud por lo que va a ser
incapaz de combatir la infección. (12)
2.7.4 VÍA DE ACCESO
Corresponde a una entrada, para que exista infección el microorganismo debe tener una vía
de ingreso en el cuerpo del huésped (boca, nariz, ojos.). (12)
2.8 VÍAS DE TRANSMISIÓN
En la consulta odontológica las vías de transmisión de enfermedades se pueden dar por
contacto directo, a través de sangre, fluidos corporales, heridas de la piel; y también se
puede transmitir por contacto indirecto a través de: instrumental, contaminación de agua,
equipos de protección individual, por medio de aerosoles, aire. (12)
2.8.1 TRANSMISIÓN POR VÍA DIRECTA
Se denomina así a la trasmisión del agente patógeno de una persona infectada otra por
contacto directo de fluidos corporales infectados con las superficies de los tejidos, a través
de una vía de acceso, como puede ser una herida en la piel, también se puede producir
cuando hay inoculación cutánea al utilizar jeringuillas u objetos punzantes que estén
contaminados, por salpicadura de sangre, saliva u otro fluido corporal en una escoriación,
herida de la piel. (13)
2.8.2 TRANSMISIÓN POR VÍA INDIRECTA
En esta transmisión se necesita de un vehículo, el cual actúa como intermediario en la
trasmisión de un agente infeccioso, como instrumental contaminado, instrumentos de alta y
baja velocidad que sean utilizados en pacientes infectados y no hayan sido
descontaminados adecuadamente, objetos, instrumentos, vestimenta que esté contaminado.
(13)
2.8.3 TRANSMISIÓN POR VÍA AÉREA
Diseminación de aerosoles microbianos suspendidos en el aire que son inhalados por vía
respiratoria. (11)
25
2.9 CLASIFICACIÓN DE LOS MICROORGANISMOS
En las clínicas odontológicas, la presencia de microorganismos representa uno de los
principales problemas en el ámbito de la salud, ya que los virus, bacterias, hongos y
levaduras pueden entrar en contacto con el cuerpo, por medio de “cortes-erosiones en la
piel, instrumentos corto punzantes, membranas de las mucosas de la boca, nariz, ojos,
inhalación e ingestión”. (8)
En este ambiente son múltiples los factores que provocan la formación y propagación de
microorganismos patógenos causantes de distintas enfermedades, motivo por el cual, una
adecuada aplicación de los protocolos de bioseguridad son la única medida preventiva,
tanto en la interacción con los pacientes como en el contacto con el instrumental que forma
parte de la actividad odontológica. De esta manera, los microorganismos más frecuentes
corresponde a: (8)
2.9.1 BACTERIAS
Se entiende a bacterias como “microorganismos unicelulares que no poseen núcleo y
tampoco orgánulos metabólicos”. Estas se encuentran rodeadas por una membrada
conformada por fosfolípidos la cual les permite alimentarse y sobrevivir, ya que se ubican
en un huésped que les brinda los nutrientes indispensables. Las bacterias se clasifican de la
siguiente manera: (14)
Tabla 1. Clasificación de las Bacterias
Fuente: Villacrés (15)
26
2.9.1.1 ESTREPTOCOCOS
Son bacterias gram positivas, esféricas, su formación es en cadenas y se consideran la
principal causa de enfermedades y dolencias frente a otras bacterias. La principal causa de
su patogenicidad se debe a que producen sustancias extracelulares que destruyen a las
células fagocíticas que los ingieren. Algunos estreptococos pueden ser tan perjudiciales
para el huésped ya que pueden digerir el tejido contaminado, provocando necrosis; sin
embargo, otras clases no son peligrosas como el caso de los usados en la producción de
derivados de la leche. (16)
Se pueden clasificar a los estreptococos de acuerdo a su apariencia y en base a los cultivos
en Agar sangre, teniendo así, los beta-hemolíticos y no beta- hemolíticos, siendo los
primeros aquellos que presentan una zona clara de hemólisis en el Agar producido por el
Streptococcus pyogenes causante de la faringitis, erisipela y fiebre reumática. (16)
Tortora (2007) argumenta que como beta no hemolíticos se encuentra el Streptococus
pneumoniae causante de la neumonía, agente que produce colonias de color verde, a causa
de la destrucción parcial de los glóbulos rojos y por la presencia de peróxido de hidrógeno
producido por la bacteria. Otro de estos tipos es el Streptococus mutans causante de la
caries dental. (16)
2.9.1.2 STAPHYLOCOCCUS
Según Pratz (2005) los Staphylococcus son microorganismos que se encuentran presentes
en la mucosa o piel, y en tanto a su morfología tienden a agruparse en forma de racimos,
esto hace que se diferencie de los streptococus ya que estos se presentan en forma de
cadena. El staphylococus aureus es uno de los principales agentes causantes de
enfermedades como afecciones gastrointestinales y cutáneas. En algunos casos, esta
bacteria ha mostrado resistencia a la penicilina, lo que constituye en un peligro para
aquellas personas que contraen este microorganismo. (17)
2.9.1.3 BACILOS GRAM POSITIVOS
Estas bacterias presentan una envoltura celular homogénea y gruesa, que en tinción gram
se tiñen de color azul o violeta. Se ubican principalmente en superficies como el suelo y en
las mucosas de los animales, y pueden provocar afecciones bucales importantes tales
como altos niveles de acidez en boca que contribuyen a la formación de placa dental,
además de producir actinomicosis. (18)
27
2.9.1.4 BACILOS GRAM NEGATIVOS
Romero (2007) expresa que, a diferencia de la coloración azul de los Gram positivos, los
gram negativos presentan una coloración rosácea ocasionada por la estructura de su
envoltura celular que posee doble membrana lipídica. A este tipo de bacilo se asocian
enfermedades como la meningitis y la gonorrea. (19)
2.9.2 HONGOS
Se encuentran presentes en ambientes como el suelo o el agua y presentan un elevado nivel
de resistencia a condiciones ambientales, e incluso al tratamiento con productos químicos.
(14)
A continuación, se presenta su clasificación:
Filamentosos: pluricelulares. Ejemplo: aspergillus fumigatos.
Levaduras: unicelulares. Ejemplo: candida albicans. (14)
2.9.3 LEVADURAS
Son un tipo de hongo unicelular, y entre la más común se halla la denominada cándida
albicans que se encuentra en el organismo humano en la zona genital, en el tracto digestivo
y en la piel. Además, las levaduras se reproducen de forma asexual. (15)
2.10 ENFERMEDADES PRODUCIDAS POR LOS MICROORGANISMOS
Las enfermedades causadas por la transmisión de microorganismos patógenos pueden
tratarse desde simples resfriados hasta afecciones de mayor gravedad como el SIDA. Los
agentes que las producen pueden ser: virus, bacterias, hongos y levaduras.
2.10.1 ENFERMEDADES DE TIPO VIRAL
La tuberculosis, la hepatitis y el VIH son algunas de las principales enfermedades
producidas por virus durante las prácticas odontológicas.
2.10.1.1 TUBERCULOSIS
La tuberculosis es una enfermedad infecciosa que según Tortora (2007) es producida por la
bacteria Mycobacterium tuberculosis. Esta enfermedad se creía completamente erradicada,
pero en la actualidad se han demostrado nuevos brotes, ya que existen datos de que al
menos un tercio de la población mundial está infectada con la bacteria TB que es la que la
28
produce, aspecto que dificulta el trabajo de las autoridades de salud para su total
eliminación. (16)
Los elevados índices de contagio ponen a los profesionales de odontología en un nivel alto
de vulnerabilidad, ya que la dicha enfermedad ataca directamente a los pulmones y puede
propagarse en el aire cuando un paciente infectado tose o estornuda. El tratamiento para
combatirla es una vacuna que no suele presentar los mejores resultados, debido a que la
bacteria que lo origina puede ser muy resistente al ambiente. (20)
2.10.1.2 HEPATITIS
Existen cuatro tipos diferentes de hepatitis, la A, B, C, D y G, siendo las dos primeras la
más comunes de transmitir durante las prácticas odontológicas, su distribución es
universal, mientras que la morbilidad y mortalidad son significativas. (21)
La hepatitis de tipo A es producida por el virus VHA, y no es mortal, pero se transmite por
agua, alimentos u objetos contaminados por restos fecales infectados con el virus, además
que se ha observado su presencia en la sangre. Es una enfermedad asintomática y afectan
principalmente a niños, debido a que sus hábitos de higiene nunca son los mejores. Existen
vacunas para prevenir su infección y es recomendable que el odontólogo se proteja de esta
afectación en localidades con niveles altos de contagio. (21)
La Hepatitis B es causada por el virus VHB esta enfermedad provoca daños serios al
hígado dando lugar a la cirrosis, y en tanto a los principales síntomas encontramos dolor
abdominal, vómito y la típica ictericia. Es una enfermedad peligrosa y de sumo cuidado ya
que puede destruir las células hepáticas, razón por la cual la vacunación contra este virus es
obligatoria para los trabajadores sanitarios. (21)
En la mayoría de casos la Hepatitis C no presenta sintomatología, aunque se ha detectado
rastros del virus VHC en la sangre y en la saliva; sin embargo, no existen registros
significativos que determinen el nivel de peligrosidad de este virus para trabajadores
sanitarios. (21)
La hepatitis D es contagiada por vía inter cutánea o inter mucosa en conjunto con el virus
de la hepatitis B, o posterior al contagio de este, presentando un alto grado de probabilidad
de desarrollar cirrosis hepática. (21)
29
2.10.1.3 VIH
El modo de contagio de este virus es por intercambio de fluidos durante las relaciones
sexuales o transfusiones de sangre, y a pesar de que existe evidencia de la presencia del
virus en la saliva, no existe evidencia de que esta sea un peligro para la salud del médico
tratante. (22)
2.10.2 ENFERMEDADES PRODUCIDAS POR BACTERIAS
Al ser el consultorio dental un medio ambiente muy contaminado, vamos a encontrar la
presencia de bacterias que pueden llegar a producir un sin número de infecciones que, no
solo van afectar al profesional de la salud, sino también al paciente y a todas las personas
que acudan a este establecimiento. Entre las más frecuentes se encuentran:
2.10.2.1 FARINGOAMIGDALITIS
Es inflamación de las amígdalas y la faringe, produciendo dolor de garganta y es una de las
enfermedades más comunes en los niños. Es causada por el Streptococus pyogenes que es
transmitido por contacto directo, es por ello que es de vital importancia tener buenos
hábitos de higiene como lavarse las manos o usar productos desinfectantes. En la
faringoamigdalitis se presenta cuadros altos de fiebre, así como la presencia de pus en la
garganta. El tratamiento ideal es antibióticos que nos dará muy buenos resultados. (23)
2.10.2.2 INFECCIONES INESPECÍFICAS EN LA PIEL
Se producen por la bacteria Staphylococus aureus que habita en la piel, y se considera que
un tercio de la población está contaminada por este agente. Suele presentar resistencia a la
penicilina, por lo que para su tratamiento es necesario usar antibióticos más agresivos
como aminoglucósidos o cefalosporinas. (8)
2.11 IDENTIFICACIÓN BACTERIANA
Para Fernández (2010) la identificación bacteriana no es más que las características
observables de las bacterias, como su morfología, desarrollo, propiedades metabólicas y
químicas, y los métodos más viables son el uso de medios de cultivos, ya que permite el
aislamiento de microorganismos, y su identificación; siempre será indispensable la
elección correcta del medio de cultivo y las condiciones adecuadas de incubación para un
desarrollo óptimo de las bacterias. (24)
30
2.11.1 RECOLECCIÓN Y MEDIOS DE TRANSPORTE
Para realizar la recolección y trasporte de muestras se debe cumplir con todas las normas
de bioseguridad, con el fin de evitar que las muestras se contaminen, y proteger al personal
encargado de cualquier infección. Los hisopos más utilizados son los de algodón, que se
utilizan para el muestreo de superficies inertes regulares e irregulares. (25)
Previo al transporte de las muestras, estas se recolectan en recipientes rotulados y limpios,
el envío se debe realiza inmediatamente, para lo que se recomienda un límite de 2 horas
desde la recolección de las muestras, controlando la temperatura utilizando hielo en gel
para mantener la cadena frío. (25)
2.11.2 TRASPORTE DE LAS MUESTRAS
El objetivo principal es que las muestras estén seguras y sin ningún riesgo de
contaminación, por lo que deben ser colocadas en contenedores isotérmicos con gel
refrigerante, distribuido uniformemente en la base y en los laterales, para asegurar que la
temperatura del contenedor no sea mayor de 10°C, a fin de asegurar la vida útil de la
muestra hasta su llegada al laboratorio. (26)
2.11.3 MEDIO DE CULTIVO
Negroni (2009) dice que el medio de cultivo es una solución equilibrada de todos los
nutrientes y factores de crecimiento indispensables para el desarrollo y multiplicación de
los microorganismos y poder aislar las diferentes especies, identificarlas y llevar a cabo
estudios complementarios. Los medios de cultivo se pueden clasificar según diferentes
criterios y utilidades: (9)
31
Tabla 2. Clasificación de Medios de Cultivos
Fuente: Microbiología Estomatológica Fundamentos y guía práctica. (9)
Para que exista un desarrollo óptimo los medios de cultivo deben reunir los siguientes
requisitos: Contener nutrientes adecuados, poseer suficiente humedad, tener un pH
ajustado, estar estéril inicialmente. (9)
2.11.3.1 AGAR SANGRE
Es un medio diferencial porque pone de relieve una hemolisina bacteriana que permite
diferenciar las especies hemolíticas de las no hemolíticas. En las especies hemolíticas
vamos a encontrar dos tipos de halos: uno transparente que nos va a indicar una hemólisis
total, que corresponde a las especies beta hemolítica (Ej Estreptococos del grupo A y
algunos del grupo D, etc.) y otro halo verdoso que denota una hemólisis parcial, y
corresponde las especies alfa hemolítica (ej. Estreptococos del grupo no A, Neumococos,
etc.). A las especies no hemolíticas se las denomina gama hemolíticas o anhemolíticas. (9)
2.11.4 SIEMBRA
Es la colocación de un microorganismo en un ambiente artificial el cual será apropiado
para su desarrollo y reproducción, una regla básica de la siembra es que se debe realizar
bajo estrictas normas de asepsia para evitar el crecimiento de gérmenes del ambiente en el
cultivo, La siembra tiene como objetivo el crecimiento de colonias microbianas en un
medio de cultivo, es importante que exista condiciones óptimas de temperatura en la
32
incubación, para brindarles a los microorganismo condiciones óptimas para su desarrollo in
vitro. (9)
2.11.4.1 SIEMBRA POR AGOTAMIENTO POR ESTRÍAS
Método rápido y sencillo de agotamiento progresivo y continuo del inóculo, sobre un
medio sólido contenido en caja petri, a medida que se realizan las estrías las bacterias
pasan del aza al medio en un número cada vez menor de tal forma que las estrían iniciales
proporcionan un crecimiento confluente, en tanto que las últimas estrías generen colonias
bien aisladas.
2.12 MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD
En la consulta odontológica, se requiere tomar medidas de bioseguridad que son necesarias
para evitar la propagación de microorganismos infecciosos que pueden causar
enfermedades, las cuales ponen en peligro la vida del profesional dental y también de los
pacientes. Por este motivo, a continuación, se presentan las más importantes: (1)
Elaborar detalladamente la historia clínica de los pacientes con el fin de detectar
posibles enfermedades infecciosas.
Usar guantes para realizar cualquier tratamiento o procedimiento odontológico, que
deben ser desechados inmediatamente. Se utilizará un par nuevo con cada paciente.
Utilizar mascarillas protectoras en la boca, verificando que la totalidad de la
cavidad bucal se encuentre cubierta, además que es importante que sea de un
material absorbente para contrarrestar la propagación de bacterias.
El profesional odontólogo y el paciente deben usar gafas protectoras.
Usar gorros y batas desechables de cuello alto y manga larga, y en caso de no
disponer de estos, hay que desinfectar periódicamente el uniforme de tela.
Las superficies que sirven de base para colocar instrumentos como lámparas,
aspiradoras y demás, deben estar cubiertos con una barrera protectora para evitar
que se infecten por el posible contacto con la sangre o fluidos salivales.
Es necesario el uso de sobreguantes para evitar contaminaciones cruzadas.
El profesional debe lavarse las manos cada vez que vaya a atender a un nuevo
paciente, incluso si ha utilizado guantes desechables.
Es importante utilizar materiales desechables siempre que sea posible, y deben ser
guardados de manera que respete las normas de asepsia.
33
Es necesario lavar, desinfectar y esterilizar constantemente los instrumentos
utilizados en la actividad odontológica. (1)
2.13 HILO RETRACTOR
Los hilos de retracción son cordones de retracción gingival y están constituidos a partir de
dos o más líneas que están entrelazadas para formar un tejido. El hilo retractor en
odontología es un material muy importante en procedimientos de prótesis dentales o
restauraciones tipo V. Hay básicamente dos tipos de hilos retractores, los entrelazados y
trenzados. (27)
2.13.1 TIPO DE HILOS RETRACTORES
2.13.1.1 HILOS RETRACTORES ENTRELAZADOS
Es el más viejo de los hilos retractores, tiene la ventaja que puede separarse y obtener
hilos más pequeños, es fácil colocar y poner en el surco gingival, pero tiene la desventaja
que se puede desenhebrar el momento que es empacado (27)
2.13.1.2 HILOS RETRACTORES TRENZADOS
Los hilos rellenos tienen una fibra central y el trenzado está en la parte exterior, por estas
características es un hilo rígido, difícil de empacar y ser retirado sin embargo proporciona
un muy buen desplazamiento horizontal de la mucosa gingival (27)
Los hilos trenzados huecos por su flexibilidad son más fáciles de empacar dentro del
surco, pero tiene como desventaja que por su poco volumen no provoca un adecuado
desplazamiento gingival horizontal (28)
7.13.2 ULTRAPAK
El Hilo ultrapak está fabricado 100% en algodón, tejido en miles de pequeños lazos
formando largas cadenas entrelazadas, volviendo sencillo el empacado bajo el margen
gingival. Por el exclusivo diseño tejido, una vez colocado ejerce una suave y continua
fuerza hacia el exterior ya que los lazos tejidos buscan expandirse nuevamente.
Estos hilos de la casa ultradent vienen en diámetros diversos desde 000 hasta 3 y debe
seleccionarse el adecuado al tejido gingival, comenzando siempre por el de menor
diámetro. (29)
34
CAPÍTULO III
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1 DISEÑO DE INVESTIGACIÓN
Se realizó una investigación de tipo experimental, Comparativa e In vitro.
EXPERIMENTAL: Es de tipo experimental debido a que se utilizó tres grupos de hilos
retractores; un grupo control, un grupo entregado por el personal de materiales dentales y
un grupo obtenido de los estudiantes, para realizar distintos ensayos experimentales, con el
fin de llegar a determinar qué grupo de hilos retractores presentaron algún tipo de
contaminación.
COMPARATIVO: Es un estudio comparativo ya que se compararon los resultados de los
tres grupos de hilos retractores.
IN VITRO: El presente proyecto de investigación es de tipo in vitro puesto que se realizó
fuera de un ser vivo, en un ambiente completamente controlado.
3.2 POBLACIÓN Y MUESTRA DE ESTUDIO
La investigación se realizó en la Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la
Universidad Central del Ecuador, este proyecto estuvo basado por el estudio de Zaragoza
María “Detección de contaminantes bacterianos en los campos desechables nuevos previos
a su uso en la consulta odontológica” (30) por lo tanto, el tipo de muestra fue de tipo No
probabilístico y por Conveniencia, en el cual de acuerdo al estudio se consideró tres grupos,
con 20 muestras de hilo retractor cada uno.
Se obtuvo 60 muestras de hilos retractores previo a su uso en el paciente, las mismas que
fueron divididas en tres grupos: Grupo A:20 muestras obtenidas directamente de los tubos
dispensadores que posee el departamento de materiales dentales de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central, estas muestras fueron entregadas por dicho
personal, grupo B 20 muestras obtenidas de estudiantes, que previamente retiraron el hilo
retractor del departamento de materiales dentales y lo manipularon, es decir, el hilo fue
transportado por el estudiante a su lugar de trabajo a través de un recipiente, en el
momento que el estudiante cogió el hilo e intentó llevar a boca, ahí se recogió la muestra,
35
por lo tanto fue antes del contacto con el paciente; y un grupo C de 20 muestras, que
fueron controladas por el investigador, en el cual el hilo fue retirado del departamento de
materiales dentales en vasos dapens esterilizados en funda, posterior a eso se recogió la
muestra.
Este proyecto fue basado por el estudio de Zaragoza María “Detección de contaminantes
bacterianos en los campos desechables nuevos previos a su uso en la consulta odontológica”
(30), por lo tanto la muestra es No probabilística ya que no se usó ninguna fórmula estadística
para escoger la muestra del estudio. Y es por Conveniencia porque resulta favorable estudiar
a toda la muestra de estudio.
3.3 CRITERIOS DE INCLUSIÓN Y EXCLUSIÓN
3.3.1 CRITERIOS DE INCLUSIÓN
Muestras de hilos retractores entrelazados Ultrapak 000.
Muestras de hilos retractores manipulados por estudiantes de noveno semestre.
Muestras de hilos retractores que no estén en contacto con el paciente (previo al
uso).
Muestras de hilos retractores provenientes del departamento de Materiales dentales
3.3.2 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN
Muestras de hilos retractores trenzados o de otra marca comercial.
Muestras de hilos retractores embebidos en alguna solución química.
Muestras de hilos retractores provenientes de frascos contaminados
Muestras de hilos retractores de estudiantes de otros semestres.
Muestras de hilos retractores que no sean provenientes del departamento de
Materiales dentales
Muestras de hilos retractores que hayan estado en contacto con el paciente.
Muestras de hilos retractores caducados.
36
3.4 CONCEPTUALIZACIÓN DE VARIABLES
INDEPENDIENTE
Hilo retractor
Material odontológico que se utiliza para
retracción de la encía con la finalidad de
tener un espacio tanto en sentido lateral
como vertical entre el margen gingival y
la terminación gingival. Material
utilizado también para restauraciones de
clase V. (3)
DEPENDIENTE
Grado de contaminación de los hilos retractores
Proceso provocado por la introducción
de sustancias o microorganismos que
afectan el medio ambiente o a los seres
vivos, alterando las condiciones
normales del mismo. (28)
Tabla 3. Conceptualización de Variables
37
3.5 OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES
Tabla 4. Operacionalización de Variables
VARIABLE DEFINICIÓN
OPERACIONAL
TIPO CLASIFIC
ACIÓN
INDICADOR
CATEGÓRICO
ESCALAS
DE
MEDICIÓN
Hilo retractor
Hilo retractor
Ultrapak 000, cortado
a 5mm
Independiente
Cuantitativa Hilo retractor tomado
directo del tuvo
dispensador.
Hilo retractor tomado
después de la
manipulación del
estudiante.
Hilo retractor tomado
del grupo control
Grupo estudio
1
Grupo estudio
2
Grupo control
3
Grado de
contaminación
de los hilos
retractores
El grado de
contaminación de los
hilos retractores se
medirá mediante:
Microscopio, Medios
de cultivo.
Dependiente Cualitativa
Nominal
Microorganismos
0: ausencia
1: escasos
2: algunos
3: numerosos
4: abundantes
38
3.6 ESTANDARIZACIÓN
Con el fin de asegurar un resultado fiable en la presente investigación, las muestras fueron
tomadas en tres grupos: en el primer grupo, el hilo fue tomado antes de la manipulación del
estudiante de noveno semestre, en el segundo grupo, el hilo fue tomado después de la
manipulación del estudiante, antes de la atención al paciente, y en el tercer grupo estuvo
controlado por el investigador; estos tres grupos de muestras fueron estandarizados por la
docente encargada del laboratorio de Química, de la Facultad de Ciencias Químicas de la
Universidad Central del Ecuador, Dra. Rachide Acosta, la cual en el transcurso de una
semana instruyó teórica y prácticamente sobre los procesos de obtención de muestras,
supervisó el progreso y aprobó su resultado, para que de esta forma se realice la obtención
de muestras y obtención de resultados con total confiabilidad.
Además, los equipos e instrumentos como estufa, microscopio, mecheros de bunsen, aza de
inoculación, que utilizó el investigador para el almacenamiento, siembra y cultivo de las
muestras, cuentan con la revisión y calibración anual obligatoria de los mismos, lo que
aseguró un resultado confiable del estudio.
3.7 MANEJO Y MÉTODO DE RECOLECCIÓN DE DATOS
Para la elaboración del proyecto se solicitó autorizaciones dirigidas al Dr. Paúl Flores
(ANEXO 1.1), y a la Dra. Marina Dona (ANEXO 1.2), docentes de pregrado de la
Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, para aceptar la dirección
del proyecto de investigación.
Como segunda fase se generó la solicitud para la aprobación del uso del laboratorio de
Química de la Facultad de Ciencias Químicas de la Universidad Central del Ecuador
dirigida a la Dr. Rachide Acosta, funcionario del laboratorio de Química. (ANEXO 7)
Como tercera fase se realizó la solicitud para la autorización del ingreso a la clínica de
tercer nivel de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador y a su vez
para la recolección de las muestras, la cual fue dirigida a la Dra. Dona Marina,
coordinadora de esta entidad. (ANEXO 8)
Las muestras se cultivaron en el laboratorio de Química de la Universidad Central del
Ecuador y se recopilaron los resultados en la hoja de recolección de datos. (ANEXO 10)
39
3.7.1 OBTENCIÓN DE MUESTRAS
Previo a la recolección de la muestra fue necesario colocarse todo el equipo de protección
como son: gorro, mascarilla, gafas, mandil y guantes estériles para evitar cualquier tipo de
contaminación tanto de la muestra como de la persona que realizará el procedimiento.
Figura 1.Equipo de protección
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Se recogió tres grupos de muestras, antes y después de la manipulación del hilo retractor y
un grupo controlado por el investigador;
GRUPO A
En este primer grupo las muestras fueron recogidas directamente del tubo dispensador de
hilo retractor que provee el departamento de materiales dentales de la clínica, antes de que
el hilo sea manipulado por el estudiante.
40
Figura 2. Hilo Retractor
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 3. Papel Encerado para colocar el hilo
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
41
Figura 4. Obtención del Hilo Retractor
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 5.Corte del Hilo Retractor
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
42
Figura 6. Muestra de Hilo Retractor
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
GRUPO B
En este segundo grupo las muestras fueron recogidas después que el estudiante haya
retirado el hilo retractor del departamento de materiales dentales y ya lo haya manipulado,
es decir, el hilo fue transportado por el estudiante a su lugar de trabajo a través de un
recipiente, en el momento que el estudiante tomó el hilo e intentó llevar a boca, ahí se
recogió la muestra, por lo tanto, fue antes del contacto con el paciente;
43
Figura 7. Pedido del Hilo Retractor en Materiales Dentales
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 8. Entrega del Hilo Retractor en Vaso Dapen
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
44
Figura 9. Muestra Transportada al Cubículo del Estudiante
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 10. Hilo Manipulado por Estudiante
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
45
Figura 11. Hilo Manipulado antes de llegar a boca
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
46
GRUPO C
Grupo C, controlado por el investigador, en el cual el hilo fue retirado del departamento de
materiales dentales, con pinzas y en vasos dapens esterilizados en funda, posterior a esto se
recogió la muestra.
Figura 12. Instrumentos y Materiales
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 13.Retiro de Pinza de Funda de Esterilizar
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
47
Figura 14.Retiro de Vaso Dapen de Funda de Esterilizar
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 15.Obtención y Corte de Hilo Retractor Mediante Pinzas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
48
Figura 16. Colocación del Hilo en el Vaso Dapen
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Para la recolección de las muestras se utilizó pinzas estériles y las muestras fueron
colocadas en tubos de ensayo que contenían 2 ml de caldo de tioglicolato como medio de
trasporte y serán sellados.
Figura 17. Colocación de Muestra en Tubos de Ensayo con Tioglicolato
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
49
Figura 18. Tubo de Ensayo sellado
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 19. Rotulación de Tubo de Ensayo
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
50
3.7.2 TRANSPORTE DE MUESTRAS
Una vez terminada la recolección de las muestras se verificó que todos los tubos de ensayo
estén bien sellados, se procedió a colocarlos en las gradillas, y guardarlos en un contenedor
(cooler) herméticamente sellado, a una temperatura de 7ºC, posteriormente se procedió a
transportarlo al laboratorio de Química de la Facultad de Ciencias Químicas de la
Universidad Central del Ecuador. (9)
Figura 20. Tubos de Ensayo en Gradillas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 21. Tubos de Ensayo en Cooler
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
51
Figura 22. Transporte de Muestras
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
3.7.3 CULTIVO
Una vez que las muestras se encontraron en un medio de enriquecimiento como el
tioglicolato, en el laboratorio se procedió a llevarlos a una estufa para su incubación a 36°C
por 24 horas para la determinación de aerobios.
Figura 23. Muestras en la Estufa
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
52
3.7.4 SIEMBRA
Se preparó cajas Petri con Agar Sangre en los cuales se realizó una descarga inicial con
hisopos estériles de cada cultivo, acto seguido se realizó una siembra por estría cruzada y
se incubaron de 24 a 48 horas a 36ºC, con el objetivo de favorecer el crecimiento y
nutrición de los microorganismos (14)
Posterior a esto se observó si existe o no crecimiento de microorganismos.
Figura 24. Caja Petri con Agar Sangre
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
53
Figura 25. Hisopo introducido en Tubo de Ensayo
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 26. Siembra por Estría Cruzada
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
54
Figura 27. Incubación de las Muestras
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
3.7.5 OBSERVACIÓN DE LOS RESULTADOS
A las 24 y 48 horas se procedió a verificar, en todos los medios de cultivo la presencia o
ausencia de contaminación bacteriana, mediante la observación macroscópica y se anotó
(ANEXO 10) los resultados de los 3 grupos en la tabla de datos.
55
GRUPO A
Figura 28. Grupo A 24 Horas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 29. Grupo A 48 Horas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
56
GRUPO B
Figura 30. Grupo B 24 Horas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 31. Grupo B 48 Horas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
57
GRUPO C
Figura 32. Grupo C 24 Horas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
Figura 33. Grupo C 48 Horas
Elaboración y Fuente: Giovanny Uyana
58
3.7.6 ELIMINACIÓN DE DESECHOS
Cuando se concluyó el estudio en el laboratorio de Química de la Facultad de Ciencias
Químicas, se procedió a la eliminación los desechos generados, las cajas Petri se
autoclavaron a 121ºC por 15 min, luego se procedió a eliminar las cajas en una funda de
desechos de color rojo correspondiendo a desechos infecciosos (ANEXO I)
3.8 TÉCNICAS PARA PROCESAMIENTO Y ANÁLISIS ESTADÍSTICOS
DE DATOS
Los datos obtenidos fueron recogidos y archivados en una hoja de Excel, los cuales fueron
entregados al ingeniero Jorge Molina.
Para el análisis de los resultados de la investigación se utilizó el programa de cálculo
estadístico SPSS (Statistical Package for the Social Sciences), mediante el cual se procesó
la información para obtener tablas estadísticas con su respectivo análisis, con el fin de
determinar las características de las variables y si existe o no una relación estadísticamente
significativa.
Para la evaluación del grado de contaminación de los hilos retractores, antes y después la
manipulación se debe establecer primero si las distribuciones muestrales son paramétricas
o no paramétricas y según el resultado se procederá a aplicar las pruebas estadísticas que
responden a las necesidades según se demuestra más adelante.
3.9 ASPECTOS BIOÉTICOS
Respeta a las personas que participaron en el estudio: El estudio respetó a los 60
estudiantes que participaron en el estudio, se les trató con amabilidad, utilizando un
lenguaje sencillo, claro y de fácil comprender, brindándoles toda la información necesaria
para satisfacer sus inquietudes; la recolección de las muestras se realizó con seriedad y sin
interrumpir las actividades en la institución y sus servicios. Además, se respetó a la
institución y al uso de las instalaciones donde se realizó el estudio. La elaboración de este
trabajo estuvo guiada por el Dr. Paúl Flores y Dra. Marina Dona (Tutor y Cotutora).
Además, contó con la aprobación del Comité de Investigación de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
59
3.9.1 RIESGOS POTENCIALES DEL ESTUDIO
El manejo de las muestras se realizó bajo el protocolo de bioseguridad y manejo de
desechos del laboratorio de Química de la Facultad de Ciencias Químicas de la
Universidad Central del Ecuador (ANEXO 10), que se basa en el establecido por el
Ministerio de Salud, con lo cual se evitará riesgos para el paciente.
3.9.2 BENEFICIOS DEL ESTUDIO
La determinación de los niveles de contaminación de los hilos retractores usados en la
clínica integral de odontología es un factor importante para desarrollar procedimientos
adecuados que permitan disminuir el riesgo de contaminación cruzada, y de esta manera
evitar la propagación de enfermedades en los pacientes como en el personal odontológico.
Los beneficios que nos proporciona el estudio es dar a conocer información de importancia
a la comunidad científica, para que puedan enterarse a través de resultados científicos
sobre la presencia de contaminación en hilos retractores manipulados por los estudiantes de
noveno semestre previo al uso en el paciente, estudio que no hay a nivel nacional.
A los profesionales de la salud oral y estudiantes de odontología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador, dando a conocer el grado de
contaminación en hilos retractores, que pueden llegar a ser fuentes de contaminación, tanto
para el paciente, como para los profesionales de la salud.
Finalmente se dará información valiosa a las autoridades pertinentes para que tomen
medidas a cerca del control y prevención de infecciones cruzadas en la Clínica Integral de
la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
60
CAPÍTULO IV
4. RESULTADOS
Una vez recolectados los datos de contaminación de los hilos retractores, éstos fueron
analizados y organizados en el programa Microsoft Excel, posteriormente se diseñó una
base de datos en el programa estadístico SPSS y se realizó pruebas de normalidad.
PRUEBAS DE NORMALIDAD
Primeramente, se debe verificar que las muestras tomadas provienen de una población con
distribución Normal, esto se realizó con las pruebas de Kolmogorov - Smirnov o con la
prueba de Shapiro - Wilk
Para cada prueba de Hipótesis, se compara el valor de significación (Sig) con el valor 0,05
(95% de confiabilidad)
Si el nivel de significación es superior a 0,05 se acepta Ho (hipótesis inicial)
Si el nivel de significación en inferior a 0,05 se acepta Ha (hipótesis alterna).
Prueba de Normalidad
Ho: Las muestras provienen de poblaciones con distribución Normal
Ha: Las muestras NO provienen de poblaciones con distribución Normal
61
Advertencias
GRUPO ESTUDIANTES 48 H es constante.
CONTROL 24 H es constante.
CONTROL 48 H es constante.
Pruebas de normalidad
Kolmogorov-Smirnov Shapiro-Wilk
Estadístico gl Sig. Estadístico gl Sig.
GRUPO PERSONAL
24 H 0,475 20 0,000 0,522 20 0,000
GRUPO PERSONAL
48 H 0,449 20 0,000 0,578 20 0,000
GRUPO ESTUDIANTES
24 H 0,263 20 0,001 0,800 20 0,001
Tabla 5. Pruebas de Normalidad
Fuente: Ing, Jaime Molina
En la prueba de Normalidad de Shapiro-Wilk los valores del nivel de significación (Sig) son
inferiores a 0,05 (95% de confiabilidad), por tanto se acepta Ha, esto es LAS MUESTRAS
NO PROVIENEN DE POBLACIONES CON DISTRIBUCIÓN NORMAL, entonces
para la comparación de grupos se utiliza pruebas no paramétricas: Mann Whitney, Wilcoxon,
Kruskal Wallis.
Valor Equivalencia
0 AUSENCIA
1 (+ escasos)
2 (++ algunos)
3 (+++ numerosos)
4 (++++
abundantes)
Tabla 6. Equivalencias
62
Tablas cruzadas: GRUPO PERSONAL 24 H*GRUPO PERSONAL 48 H
GRUPO PERSONAL 24 H*GRUPO PERSONAL 48 H tabulación cruzada
GRUPO PERSONAL 48 H
TOTAL
AUSENCIA + escasos ++ algunos
GRUPO
PERSONAL
24 H
AUSENCIA
Cant. 15 1 0 16
% 75,0% 5,0% 0,0% 80,0%
+ escasos
Cant. 0 2 1 3
% 0,0% 10,0% 5,0% 15,0%
++ algunos
Cant. 0 0 1 1
% 0,0% 0,0% 5,0% 5,0%
TOTAL
Cant. 15 3 2 20
% 75,0% 15,0% 10,0% 100,0%
Tabla 7. Grupo Personal 24 h*Grupo personal 48 H Tabulación Cruzada
Fuente: Ing. Jaime Molina
De los 16 datos con ausencia a las 24 horas, 15 se mantienen con ausencia y uno pasa a
+ escasos a las 48 horas
De los 3 datos con + escasos a las 24 horas, 2 se mantienen con + escasos y 1 pasa a
tener ++ algunos.
Del 1 dato con ++ algunos a las 24 horas, 1 se mantienen con ++ algunos
63
Tablas cruzadas: GRUPO ESTUDIANTES 24 H*GRUPO ESTUDIANTES 48 H
GRUPO ESTUDIANTES 24 H*GRUPO ESTUDIANTES 48 H tabulación cruzada
GRUPO
ESTUDIANTES
48 H TOTAL
++++
abundantes
GRUPO
ESTUDIANTES 24 H
++ algunos
Cant. 7 7
% 35,0% 35,0%
+++ numerosos
Cant. 10 10
% 50,0% 50,0%
++++ abundantes
Cant. 3 3
% 15,0% 15,0%
TOTAL
Cant. 20 20
% 100,0% 100,0%
Tabla 8. Grupo Estudiantes 24 h*Grupo Estudiantes 48 H tabulación cruzada
Fuente: Ing. Jaime Molina
En este caso todos los datos pasan a un solo estado (++++ abundantes)
64
Tablas cruzadas: CONTROL 24 H*CONTROL 48 H
CONTROL 24 H*CONTROL 48 H tabulación cruzada
CONTROL
48 H TOTAL
AUSENCIA
CONTROL
24 H AUSENCIA
Cant. 20 20
% 100,0% 100,0%
TOTAL
Cant. 20 20
% 100,0% 100,0%
Tabla 9. Control 24 h*Control 48 H Tabulación Cruzada
Fuente: Ing. Jaime Molina
En esta tabla todas las muestras presentan ausencia a las 24 horas y se mantiene en
ausencia a las 48 horas.
COMPARACIÓN A LAS 24 HORAS Y 48 HORAS CUAL DE LAS MUESTRAS
TIENE MAYORES O MENORES VALORES
Para las siguientes pruebas se plantean las hipótesis:
65
Ho: (hipótesis nula) Las muestras proceden de poblaciones con la misma distribución de
probabilidad (Medias, medianas similares)
Ha: (hipótesis alternativa) Existen diferencias respecto a la tendencia central de las
poblaciones (Medias, medianas no son similares)
COMPARACIÓN A LAS 24 HORAS
DESCRIPTIVOS
24 HORAS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo Máximo
Límite
inferior
Límite
superior
GRUPO
PERSONAL 20 0,25 0,550 0,123 -0,01 0,51 0 2
GRUPO
ESTUDIANTES 20 2,80 0,696 0,156 2,47 3,13 2 4
GRUPO
CONTROL 20 0,00 0,000 0,000 0,00 0,00 0 0
TOTAL 60 1,02 1,372 0,177 0,66 1,37 0 4
Tabla 10. Comparación a las 24 Horas
Fuente: Ing. Jaime Molina
66
Gráfico 1. Prueba de Kruskal-Wallis
Fuente: Ing. Jaime Molina
De la Prueba de Kruskal-Wallis, el valor del nivel de significación (Sig. asintótica (prueba
bilateral) = 0,000) es inferior a 0,05 (95% de confiabilidad), luego se acepta Ha, esto es,
existen diferencias respecto a la tendencia central de las poblaciones. No todas las medias,
medianas de las muestras son similares.
67
Para determinar cuáles son similares o diferentes se hace la prueba dos a dos:
Gráfico 2. Prueba Dos a Dos
Fuente: Ing. Jaime Molina
68
RESUMEN: 24 HORAS
GRUPOS N
Subconjunto para alfa = 0.05
1 2
CONTROL 20
0,00
AUSENCIA
GRUPO PERSONAL 20
0,25
AUSENCIA
GRUPO
ESTUDIANTES 20
2,80
+++ numerosos
Sig.
0,391 1,000
Tabla 11. Resumen: 24 horas
Fuente: Ing. Jaime Molina
De la prueba dos a dos son similares entre CONTROL y GRUPO PERSONAL y la muestra
de GRUPO ESTUDIANTES es la que tiene el mayor valor y es diferente a las otras dos
muestras.
Esto indica que las muestras no están al mismo nivel al iniciar el estudio
69
COMPARACIÓN A LAS 48 HORAS
DESCRIPTIVOS
48 HORAS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo Máximo
Límite
inferior
Límite
superior
GRUPO
PERSONAL 20 0,35 0,671 0,150 0,04 0,66 0 2
GRUPO
ESTUDIANTES 20 4,00 0,000 0,000 4,00 4,00 4 4
GRUPO
CONTROL 20 0,00 0,000 0,000 0,00 0,00 0 0
TOTAL 60 1,45 1,863 0,241 0,97 1,93 0 4
Tabla 12. Comparación a las 48 horas
Fuente: Ing. Jaime Molina 3
70
Gráfico 3. Prueba Kruskal-Wallis
Fuente: Ing. Jaime Molina
De la Prueba de Kruskal-Wallis, el valor del nivel de significación (Sig. asintótica (prueba
bilateral) = 0,000) es inferior a 0,05 (95% de confiabilidad), luego se acepta Ha, esto es,
existen diferencias respecto a la tendencia central de las poblaciones. No todas las medias,
medianas de las muestras son similares.
71
Para determinar cuáles son similares o diferentes se hace la prueba dos a dos:
Gráfico 4. Prueba Dos a Dos
Fuente: Ing. Jaime Molina
72
RESUMEN: 48 HORAS
GRUPOS N
Subconjunto para alfa = 0.05
1 2
CONTROL 20
0,00
AUSENCIA
GRUPO PERSONAL 20
0,35
AUSENCIA
GRUPO
ESTUDIANTES 20
4,00
++++ abundantes
Sig. 0,300 1,000
Tabla 13. Resumen: 48 horas
Fuente: Ing. Jaime Molina
De la prueba dos a dos son similares entre CONTROL y GRUPO PERSONAL y la muestra
de GRUPO ESTUDIANTES es la que tiene el mayor valor y es diferente a las otras dos
muestras.
Esto indica que las muestras no están al mismo nivel de contaminación a las 48 horas.
En ambos casos las dos muestras de CONTROL y GRUPO PERSONAL son similares y la
de GRUPO ESTUDIANTES es la que tiene los mayores valores; para determinar cual
tiene mayor variación se realiza la prueba de las diferencias (no empiezan ni terminan al
mismo nivel)
73
COMPARACIÓN EN LAS DIFERENCIAS
DESCRIPTIVOS
DIFERENCIAS
N Media
Desviación
estándar
Error
estándar
95% del intervalo de
confianza para la media
Mínimo Máximo
Límite
inferior
Límite
superior
GRUPO
PERSONAL 20 0,10 0,308 0,069 -0,04 0,24 0 1
GRUPO
ESTUDIANTES 20 1,20 0,696 0,156 0,87 1,53 0 2
CONTROL 20 0,00 0,000 0,000 0,00 0,00 0 0
TOTAL 60 0,43 0,698 0,090 0,25 0,61 0 2
Tabla 14. Prueba de Diferencias
Fuente: Ing. Jaime Molina
74
Gráfico 5. Prueba de Kruskal-Wallis
Fuente: Ing. Jaime Molina
De la Prueba de Kruskal-Wallis, el valor del nivel de significación (Sig. asintótica (prueba
bilateral) = 0,000) es inferior a 0,05 (95% de confiabilidad), luego se acepta Ha, esto es,
existen diferencias respecto a la tendencia central de las poblaciones. No todas las medias,
medianas de las muestras son similares.
Para determinar cuáles son similares o diferentes se hace la prueba dos a dos:
75
Gráfico 6. Prueba Dos a Dos
Fuente: Ing. Jaime Molina
76
DIFERENCIAS
GRUPOS N
Subconjunto para alfa = 0.05
1 2
CONTROL 20 0,00
GRUPO PERSONAL 20 0,10
GRUPO
ESTUDIANTES 20 1,20
Sig. 0,598 1,000
Tabla 15. Cuadro de Diferencias
Fuente: Ing. Jaime Molina
De la prueba dos a dos son similares las variaciones de CONTROL y GRUPO PERSONAL
y la muestra de GRUPO ESTUDIANTES es la que tiene el mayor valor de variación y es
diferente a las otras dos muestras.
77
GRAFICOS DE BARRAS:
Gráfico 7. Comparación 24 Horas
Fuente: Ing. Jaime Molina
Mayores valores se tiene en la muestra de Grupo estudiantes
Gráfico 8. Comparación 48 Horas
Fuente: Ing. Jaime Molina
Mayores valores se tiene en la muestra de Grupo estudiantes
0,250
2,800
0,0000,000
0,500
1,000
1,500
2,000
2,500
3,000
GRUPO PERSONAL GRUPO ESTUDIANTES CONTROL
COMPARACION 24 HORAS
0,350
4,000
0,0000,000
0,500
1,000
1,500
2,000
2,500
3,000
3,500
4,000
4,500
GRUPO PERSONAL GRUPO ESTUDIANTES CONTROL
COMPARACION 48 HORAS
78
Gráfico 9. Comparación de Diferencias
Fuente: Ing. Jaime Molina
Mayores valores se tienen en la muestra de Grupo estudiantes, es la que tiene la mayor
variación entre las 24 horas y las 48 horas.
0,100
1,200
0,0000,000
0,200
0,400
0,600
0,800
1,000
1,200
1,400
GRUPO PERSONAL GRUPO ESTUDIANTES CONTROL
COMPARACION DIFERENCIAS
79
CAPÍTULO V
5.1 DISCUSIÓN
El objetivo del presente trabajo fue determinar el grado de contaminación presente en hilos
retractores que proporciona la Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la
Universidad Central del Ecuador. Para este fin se tomó tres grupos. Un Grupo Control, un
grupo de estudiantes de noveno semestre que realizan prácticas en la clínica integral y un
grupo conformado por el personal de materiales dentales y así definir qué grupo presenta
mayor grado de contaminación. Los resultados indicaron que las muestras de hilos
retractores manipulados por los estudiantes presentan mayor nivel de contaminación frente
a las muestras de hilos tomadas del personal de materiales dentales.
Determinando así que el grupo con el nivel más alto de contaminación fue el grupo de
estudiantes con un 100% de contaminación; mientras que el grupo del personal de
materiales dentales presentó un nivel más bajo con solo el 25% de contaminación.
Teniendo en cuenta que los niveles de contaminación de las muestras del personal de
materiales, tuvieron una clasificación de 1 y 2 es decir presencia de contaminación
“escasa” y “algunos”, siendo así una contaminación no muy relevante frente a la
contaminación del grupo de estudiantes, que presentó una clasificación de tipo 4 es decir,
contaminación “abundante”.
Estos resultados son similares a los obtenidos por Revelo (2017) (31), que realizó un
estudio entre alumnos y personal administrativo sobre contaminación en esferos en la
misma Facultad. Este estudio nos permite establecer un nivel de comparación en cuanto a
resultados. Según Revelo se observó que los esferos utilizados por los estudiantes en la
clínica tuvieron una contaminación muy importante y mayor en comparación al personal
administrativo, por el mismo hecho de que los estudiantes utilizan los esferos en la clínica,
un medio ambiente en el cual, cualquier objeto o material dental es propenso a
contaminación. (31)
Según en el estudio realizado por Flores (2016) (32) en el cual determinó que la utilización
de aire acondicionado, así como el proceso de aerosolización permite que los
microorganismos se esparzan por toda el área de trabajo, en un radio hasta de dos metros
por lo que cualquier objeto o material dental que se encuentre dentro del área de trabajo se
puede contaminar fácilmente y constituir un riesgo para la salud, tanto del profesional
80
como del paciente, en nuestro estudio el hilo retractor es propenso a contaminación debido
a la producción de aerosoles emitidos por parte de las turbinas. (32)
También debemos tomar en cuenta lo emitido por Barrancos (2006) (33), la bioseguridad
son todas las normas, procedimientos y cuidados que se deben tomar en cuenta en el
momento de brindar atención al paciente y/o al manipular instrumental contaminado, más
aún en centros de formación de profesionales de Odontología. A esto añade Rodríguez
(2006) (34), que la desinfección son todos los procedimientos que permite mantener una
buena higienización de los elementos inanimados, en este caso en el ambiente
odontológico. (34)
En tanto a contaminación cruzada Zenteno (2011) (35), menciona que en el momento de
realizar una atención odontológica, debemos ser muy cauteloso y cumplir todas las normas
referentes a Bioseguridad en Odontología, puesto que si no se toma las medida necesarias,
el profesional es el principal responsable de transmitir microorganismos de las manos hacia
la boca y el cuerpo del paciente provocando a lo que conocemos como Infección Cruzada.
Así mismo Gutiérrez (2008) (36), indican que la Infección Cruzada, es el mayor riesgo de
infección para el personal que trabaja en el área de salud y más aún cuando se presentan
lesiones o heridas abiertas en la superficie corporal, debido a que muchas de las
infecciones o enfermedades de importancia pueden ser transmitidas por fluidos corporales
tales como sangre o saliva, aerosoles, instrumentos y equipos contaminados; Y el
odontólogo en su consulta diaria se encuentra expuesto a ser partícipe de infección cruzada
si no se toma medidas de bioseguridad. (36)
81
5.2 CONCLUSIONES
Se determinó mediante medios de enriquecimiento y de cultivo como tioglicolato y
agar sangre respectivamente, la presencia de contaminación en los hilos retractores
de los grupos experimentales.
Se evidenció mayor grado de contaminación en los hilos retractores manipulados por
los estudiantes con un 100% frente a los hilos retractores entregados por el personal
de materiales dentales con un 25%.
Las muestras utilizadas en el grupo control presentaron contaminación nula, esto
indica, que llevando un protocolo adecuado previo al uso del hilo retractor en el
paciente, no se corre ningún tipo de peligro en producir contaminación cruzada. Dato
importante para el control y prevención de infecciones cruzadas en la Clínica de la
Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
82
5.3 RECOMENDACIONES
Se recomienda dar inicio a futuras líneas de investigación en el campo de
Bioseguridad que permita dar información y concientizar sobre las posibles
infecciones cruzadas en la práctica odontológica, lo cual además aportará con datos
inéditos, al no existir estudios a nivel nacional sobre la presencia contaminación en
hilos retractores.
Realizar más pruebas específicas para determinar qué tipos de microorganismos
son los que colonizan estas muestras, tales como Pruebas de catalasa, coagulasa y
tinción Gram.
Tener en cuenta la forma de manipulación tanto en los hilos retractores, al igual del
instrumental que se usa para su colocación, para poder garantizar la mayor asepsia
posible durante los tratamientos dentales.
Se sugiere realizar charlas y conferencias sobre bioseguridad, para enfatizar su
importancia y garantizar una atención de calidad, en la Clínica Integral de la
Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
Con este precedente se cree una normativa para el control y revisión periódica de
materiales detales de los estudiantes de Odontología, a fin de mantener la
bioseguridad y asepsia en este campo clínico-odontológico.
83
5.4 BIBLIOGRAFÍA
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S, editor. Madrid: Manual Moderno; 2016.
2. Williams G, Denyer S, Hosein I, Hill D, Maillard J. The development of a new three-
step protocol to determine the efficacy of disinfectant wipes on surfaces contaminated
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Universidad Nacional Autónoma de México ENdTS, editor. México; 2005.
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9. Negroni M. Microbiología Estomatológica: Fundamentos y Guía Práctica. Segunda
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Cortesi V. Manual Práctico para el Auxiliar de Odontología. Primera ed. Barcelona:
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5.5 ANEXOS
Anexo 1. Aceptación de Tutorias
87
88
Anexo 2. Aprobación del Tema
89
90
91
Anexo 3. Idoneidad Ética y Experticia del Tutor
92
Anexo 4. Idoneidad y Experticia del Estudiante
IDONEIDAD Y EXPERTICIA DEL ESTUDIANTE
93
Anexo 5. Declaración de Conflictos de Interés del Tutor
94
Anexo 6. Declaración de Conflictos de Interés del Investigador
95
Anexo 7. Oficio Dirigido a la Facultad de Ciencias Químicas
96
Anexo 8. Oficio para Ingreso a Clínica de la FO de la UCE
97
Anexo 9. Autorización para Eliminación de Desechos en Facultad de Ciencias Químicas
98
Anexo 10. Hoja de Recolección de Datos
GRUPO PERSONAL GRUPO ESTUDIANTES CONTROL
REPETICIÓN 24 H 48 H 24 H 48 H 24 H 48 H
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
Elaborado por: GIOVANNY UYANA
99
Anexo 11. Protocolo de Manejo de Desechos Infecciosos
100
Anexo 12. Certificado del Laboratorio de Ciencias Químicas
101
Anexo 13. Resultados
102
Anexo 14. Certificado del Comité de Ética
103
Anexo 15. Solicitud de Ajuste de Metodología
104
105
106
107
108
Anexo 16. Renuncia del Trabajo Estadístico
109
Anexo 17. Certificado del Abstract
110
Anexo 18. Certificado del URKUND
111
Anexo 19. Formato de Repositorio
112